| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-11页 |
| 引言 | 第11-25页 |
| 1、植物抗病基因 | 第11-16页 |
| ·两种主要的植物抗病遗传基础模式:配体-受体模型和防卫(Guard)模型 | 第11-13页 |
| ·已克隆抗病基因的结构与功能 | 第13-14页 |
| ·植物抗病基因的潜能开发与应用 | 第14-16页 |
| 2、甜瓜抗病基因研究进展 | 第16-23页 |
| ·甜瓜抗病基因 | 第16-19页 |
| ·甜瓜遗传转化研究 | 第19-23页 |
| 3、本研究的目的和意义 | 第23-25页 |
| 第一章 R-Fom-2基因的亚克隆与植物表达载体构建 | 第25-34页 |
| 1 材料与方法 | 第25-30页 |
| ·实验材料 | 第25-26页 |
| ·植物材料、菌种与质粒 | 第25页 |
| ·试剂 | 第25页 |
| ·主要仪器 | 第25-26页 |
| ·实验方法 | 第26-30页 |
| ·碱裂解法提取质粒pMD18-T/R-Fom-2 | 第26页 |
| ·PCR 扩增R-Fom-2 基因 | 第26-27页 |
| ·PCR 反应产物的回收 | 第27页 |
| ·目的基因R-Fom-2 的亚克隆 | 第27-28页 |
| ·重组子pMD18-T/R-Fom-2-2 的筛选 | 第28-29页 |
| ·植物表达载体pCA-Fom-2 的构建 | 第29-30页 |
| 2. 结果与分析 | 第30-32页 |
| ·重组质粒pMD18-T/R-Fom-2-2 的PCR 鉴定 | 第30页 |
| ·重组质粒pMD18-T/R-Fom-2-2 的酶切鉴定 | 第30-31页 |
| ·植物表达载体质粒pCA-Fom-2 的初步鉴定 | 第31-32页 |
| ·植物表达载体质粒pCA-Fom-2 的PCR 鉴定 | 第32页 |
| ·植物表达载体质粒pCA-Fom-2 的酶切鉴定 | 第32页 |
| 3. 讨论 | 第32-34页 |
| 第二章 甜瓜组织再生体系的的建立 | 第34-39页 |
| 1 材料与方法 | 第34-35页 |
| ·实验材料与试剂 | 第34页 |
| ·植物材料 | 第34页 |
| ·试剂 | 第34页 |
| ·实验方法 | 第34-35页 |
| ·甜瓜无菌苗的获得 | 第34页 |
| ·培养环境 | 第34页 |
| ·甜瓜直接出芽培养基的选择 | 第34页 |
| ·甜瓜外植体的选择 | 第34页 |
| ·继代培养 | 第34-35页 |
| ·生根培养 | 第35页 |
| 2 结果与分析 | 第35-36页 |
| ·直接出芽培养基的选择 | 第35页 |
| ·甜瓜再生体系中外植体的确定 | 第35-36页 |
| ·丛生芽生根 | 第36页 |
| ·试管苗的移栽 | 第36页 |
| 3 讨论 | 第36-39页 |
| 第三章 根癌农杆菌介导R-Fom-2 基因转化甜瓜及其检测分析 | 第39-53页 |
| 1 材料与方法 | 第39-45页 |
| ·实验材料 | 第39-40页 |
| ·植物材料与菌种 | 第39页 |
| ·试剂 | 第39页 |
| ·培养基 | 第39-40页 |
| ·实验方法 | 第40-45页 |
| ·根癌农杆菌的转化及鉴定 | 第40-41页 |
| ·抑菌抗生素羧苄青霉素Carb 浓度的确定 | 第41页 |
| ·Hyg 选择压力的确定 | 第41页 |
| ·甜瓜的转化 | 第41-42页 |
| ·转基因甜瓜植株的分子检测 | 第42-44页 |
| ·转基因甜瓜离体叶片抗病性检测分析 | 第44-45页 |
| 2. 结果与分析 | 第45-53页 |
| ·农杆菌转化子的PCR 鉴定 | 第45-46页 |
| ·羧苄青霉素(Carb)浓度的确定 | 第46页 |
| ·Hyg 选择压力的确定 | 第46-47页 |
| ·预培养时间对甜瓜遗传转化的影响 | 第47页 |
| ·共培养时间对甜瓜遗传转化的影响 | 第47-48页 |
| ·转基因甜瓜潮霉素基因部分片断的PCR 鉴定 | 第48页 |
| ·转基因甜瓜R-Fom-2 的RT-PCR 鉴定 | 第48-49页 |
| ·转基因甜瓜离体叶片抗病性分析 | 第49-53页 |
| 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-62页 |
| 附图 | 第62-65页 |
| 英文缩略语 | 第65-66页 |
| 在读期间发表论文清单 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
