| 中文文摘 | 第1-7页 |
| 英文摘要 | 第7-14页 |
| 英文缩略词表 | 第14-15页 |
| 第一章 TCS对MDA-MB-231和MCF—7乳腺癌细胞的影响 | 第15-31页 |
| 前言 | 第15页 |
| 1 材料与方法 | 第15-19页 |
| ·实验细胞与细胞培养条件 | 第15页 |
| ·实验材料 | 第15-17页 |
| ·主要实验仪器 | 第15-16页 |
| ·细胞培养主要实验材料和试剂 | 第16页 |
| ·主要溶液的配制 | 第16-17页 |
| ·实验方法 | 第17-19页 |
| ·细胞台盼蓝拒染试验计数活细胞、绘制细胞生长曲线 | 第17页 |
| ·TCS处理前后细胞形态学观察 | 第17-18页 |
| ·MTT实验 | 第18-19页 |
| ·流式细胞术测乳腺癌细胞周期和凋亡 | 第19页 |
| 2 实验结果 | 第19-26页 |
| ·细胞生长曲线 | 第19-20页 |
| ·TCS处理前后两种乳腺癌细胞的形态学变化 | 第20-21页 |
| ·MTT结果 | 第21-24页 |
| ·TCS对MDA-MB-231细胞的生长抑制作用 | 第21-22页 |
| ·TCS对MCF-7细胞的生长抑制作用 | 第22-23页 |
| ·TCS作用下不同乳腺癌细胞系之间生长抑制率的比较 | 第23-24页 |
| ·MDA-MB-231细胞的药物浓度作用曲线 | 第24页 |
| ·流式细胞仪分析结果 | 第24-26页 |
| ·MDA-MB-231和MCF-7细胞经TCS处理前后的细胞周期 | 第24-26页 |
| ·MDA-MB-231和MCF-7细胞经TCS处理前后细胞凋亡值 | 第26页 |
| 3 讨论 | 第26-30页 |
| ·天花粉蛋白的抗肿瘤作用 | 第26-27页 |
| ·TCS对MDA-MB-231和MCF-7乳腺癌细胞增殖的影响 | 第27-28页 |
| ·TCS对MDA-MB-231和MCF-7乳腺癌细胞的敏感性差异 | 第28-29页 |
| ·TCS对MDA-MB-231和MCF-7乳腺癌细胞周期和凋亡的影响 | 第29-30页 |
| 4 小结 | 第30-31页 |
| 第二章 TCS对MDA-MB-231乳腺癌细胞ERα基因表达及甲基化的影响 | 第31-57页 |
| 前言 | 第31页 |
| 1 材料与方法 | 第31-47页 |
| ·实验细胞与细胞培养条件 | 第31页 |
| ·实验材料 | 第31-36页 |
| ·细胞培养主要实验仪器和试剂 | 第31-32页 |
| ·RT-PCR仪器和试剂 | 第32-33页 |
| ·MSP试剂 | 第33页 |
| ·Western-blot材料和试剂 | 第33-34页 |
| ·主要溶液的配制 | 第34-36页 |
| ·实验方法 | 第36-47页 |
| ·RT-PCR检测细胞ERαmRNA的表达 | 第36-40页 |
| ·MSP检测TCS、5-Aza-C处理前后细胞ERα甲基化状态 | 第40-43页 |
| ·Western blot法 | 第43-47页 |
| ·TCS对MDA-MB-231乳腺癌细胞内分泌治疗敏感性的影响 | 第47页 |
| 2 实验结果 | 第47-51页 |
| ·RT-PCR结果 | 第47-48页 |
| ·MSP结果 | 第48-49页 |
| ·Western blot结果 | 第49-50页 |
| ·TCS对MDA-MB-231乳腺癌细胞内分泌治疗敏感性的影响 | 第50-51页 |
| 3 讨论 | 第51-56页 |
| ·ERα阴性乳腺癌基因表达沉默的研究 | 第51-53页 |
| ·ERα基因5'端核心启动子区CpG岛甲基化检测 | 第53-54页 |
| ·天花粉蛋白的去甲基化效应 | 第54页 |
| ·TCS处理MDA-MB-231乳腺癌细胞株后恢复对他莫昔芬的敏感性 | 第54-56页 |
| 4 小结 | 第56-57页 |
| 第三章 TCS对ERα阴性乳腺癌裸鼠移植瘤生长及ERα表达的影响 | 第57-72页 |
| 前言 | 第57页 |
| 1 材料与方法 | 第57-62页 |
| ·材料和试剂 | 第57-58页 |
| ·主要仪器和材料 | 第57页 |
| ·主要溶液的配制 | 第57-58页 |
| ·裸鼠饲养 | 第58页 |
| ·细胞培养 | 第58页 |
| ·人乳腺癌裸鼠皮下移植瘤模型的建立 | 第58-59页 |
| ·各组不同处理和检测方法 | 第59-62页 |
| ·给药步骤 | 第59页 |
| ·乳腺癌裸鼠移植瘤体积、重量的测量和血液常规生化的检测 | 第59页 |
| ·苏木精伊红(HE)染色光镜观察 | 第59-60页 |
| ·RT-PCR检测裸鼠皮下移植瘤ERαmRNA的表达 | 第60-61页 |
| ·MSP检测裸鼠皮下移植瘤ERα的甲基化状态 | 第61-62页 |
| ·Western blot印迹法检测裸鼠皮下移植瘤ERα蛋白表达 | 第62页 |
| 2 结果 | 第62-67页 |
| ·人乳腺癌裸鼠皮下移植瘤模型的成功建立 | 第62-64页 |
| ·TCS对裸鼠移植瘤的影响 | 第64-65页 |
| ·TCS对荷瘤裸鼠肝肾功能及血液系统的影响 | 第65-66页 |
| ·TCS对裸鼠移植瘤细胞形态学(HE染色)的改变 | 第66页 |
| ·TCS对裸鼠移植瘤ERα基因mRNA的表达 | 第66-67页 |
| ·裸鼠皮下移植瘤ERα的甲基化状态 | 第67页 |
| ·TCS对裸鼠移植瘤ERα蛋白表达的影响 | 第67页 |
| 3 讨论 | 第67-71页 |
| ·TCS对乳腺癌裸鼠移植瘤的抑瘤作用 | 第67-69页 |
| ·TCS对乳腺癌裸鼠移植瘤ERα的去甲基化效应 | 第69-70页 |
| ·TCS的不良反应 | 第70-71页 |
| 4 小结 | 第71-72页 |
| 问题与展望 | 第72-73页 |
| 结论 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-84页 |
| 综述一 | 第84-107页 |
| 综述二 | 第107-123页 |
| 致谢 | 第123-124页 |
| 攻读学位期间主要的研究成果 | 第124页 |
