| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-9页 |
| 目录 | 第9-12页 |
| 缩略词表 | 第12-14页 |
| 前言 | 第14-17页 |
| 第一章 TLR3信号通路在树突状细胞参与的免疫调控中作用的研究进展 | 第17-23页 |
| 1 树突状细胞 | 第17-19页 |
| ·树突状细胞的生物学特性 | 第17-18页 |
| ·树突状细胞与自身免疫性疾病 | 第18-19页 |
| 2 TLR3信号通路 | 第19-21页 |
| ·Toll样受体 | 第19-20页 |
| ·TLR3通路与树突状细胞 | 第20-21页 |
| 3 小分子化合物药用开发前景 | 第21-23页 |
| 第二章 Chaeoglobosin Fex对TLR3通路调控作用的初探 | 第23-32页 |
| 1 引言 | 第23页 |
| 2 实验材料与方法 | 第23-26页 |
| ·实验材料 | 第23-24页 |
| ·实验对象 | 第23页 |
| ·实验试剂 | 第23-24页 |
| ·实验仪器和设备 | 第24页 |
| ·实验方法 | 第24-26页 |
| ·骨髓细胞的制备与树突状细胞的培养 | 第24页 |
| ·CCK-8法检测细胞活力 | 第24-25页 |
| ·Annexin V/PI双染法检测细胞凋亡 | 第25页 |
| ·酶联免疫法(ELISA)检测树突状细胞IFN-β的表达水平 | 第25-26页 |
| ·Q-PCR检测树突状细胞IFN-β mRNA的表达 | 第26页 |
| ·数据统计分析 | 第26页 |
| 3 实验结果 | 第26-30页 |
| ·髓源性DC形态学观察 | 第26-27页 |
| ·Cha Fex不影响DC活力 | 第27-28页 |
| ·Cha Fex不影响DC凋亡 | 第28-29页 |
| ·Cha Fex抑制poly(I:C)诱导的DC中IFN-β的表达 | 第29-30页 |
| 4 讨论 | 第30-32页 |
| 第三章 Chaeoglobosin Fex抑制TLR3配体诱导的树突状细胞表型和功能的成熟 | 第32-39页 |
| 1 引言 | 第32页 |
| 2 实验材料与方法 | 第32-34页 |
| ·实验材料 | 第32页 |
| ·实验对象 | 第32页 |
| ·实验试剂 | 第32页 |
| ·实验仪器和设备 | 第32页 |
| ·实验方法 | 第32-34页 |
| ·Q-PCR检测树突状细胞炎性因子mRNA的表达 | 第32-33页 |
| ·流式细胞术检测DC表面标志 | 第33-34页 |
| ·混合淋巴细胞反应 | 第34页 |
| ·数据统计分析 | 第34页 |
| 3 实验结果 | 第34-37页 |
| ·Cha Fex抑制poly(I:C)诱导的DC内炎性因子的产生 | 第34-35页 |
| ·Cha Fex对poly(I:C)诱导的表面标志表达的增加有抑制作用 | 第35-37页 |
| ·Cha Fex抑制DC的抗原递呈功能 | 第37页 |
| 4 讨论 | 第37-39页 |
| 第四章 Chaeoglobosin Fex对TLR3信号通路的调控作用 | 第39-48页 |
| 1 引言 | 第39页 |
| 2 实验材料与方法 | 第39-41页 |
| ·实验材料 | 第39-40页 |
| ·实验对象 | 第39页 |
| ·实验试剂 | 第39页 |
| ·实验仪器和设备 | 第39-40页 |
| ·实验方法 | 第40-41页 |
| ·流式细胞术检测DC吞噬能力 | 第40页 |
| ·流式细胞术检测DC对poly(I:C)-Rhodamine的摄取 | 第40页 |
| ·Western blot | 第40-41页 |
| ·数据统计分析 | 第41页 |
| 3 实验结果 | 第41-46页 |
| ·Cha Fex对DC吞噬能力有抑制作用 | 第41-42页 |
| ·Cha Fex对DC内吞poly(I:C)的过程没有影响 | 第42页 |
| ·poly(I:C)激活TLR3下游信号通路 | 第42-43页 |
| ·Cha Fex抑制IRF3信号通路 | 第43-44页 |
| ·Cha Fex抑制NF-κB通路 | 第44-45页 |
| ·Cha Fex选择性抑制MAPK通路 | 第45-46页 |
| 4 讨论 | 第46-48页 |
| 全文总结 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-55页 |
| 附录 | 第55-58页 |
| 硕士期间科研成果 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
