摘要 | 第1-10页 |
ABSTRACT | 第10-23页 |
前言 | 第23-29页 |
第一章 SD大鼠骨髓间充质干细胞分离、体外培养及鉴定 | 第29-41页 |
·目的及意义 | 第29页 |
·材料和方法 | 第29-33页 |
·动物及材料 | 第29-30页 |
·实验方法 | 第30-32页 |
·目标细胞定向诱导分化为软骨细胞 | 第32-33页 |
·统计学分析 | 第33页 |
·结果 | 第33-36页 |
·培养细胞的形态学变化 | 第33-34页 |
·培养的目标细胞生物学特性测定 | 第34-35页 |
·细胞表面标志物表达 | 第35-36页 |
·MSC以软骨细胞为目标的定向诱导培养 | 第36页 |
·讨论 | 第36-40页 |
·MSCs分离培养方法 | 第36-37页 |
·细胞的生物学特性 | 第37-39页 |
·细胞表面标志物 | 第39页 |
·干细胞定向诱导分化 | 第39-40页 |
·结论 | 第40-41页 |
第二章 大潮气量机械通气所致肺损伤大鼠模型的制备 | 第41-55页 |
·研究背景及目的 | 第41页 |
·材料与方法 | 第41-44页 |
·材料 | 第41-42页 |
·方法 | 第42-44页 |
·结果 | 第44-51页 |
·血气结果 | 第44-48页 |
·肺湿干重比 | 第48-49页 |
·肺部病理组织 | 第49-50页 |
·肺泡灌洗液内PMN数量及比例 | 第50-51页 |
·讨论 | 第51-54页 |
·VILI及生物伤的关系 | 第51-52页 |
·VILI制作采用通气参数 | 第52-53页 |
·VILI模型病理变化 | 第53-54页 |
·结论 | 第54-55页 |
第三章 MSC使用对VILI模型肺损伤及肺部炎症反应的影响 | 第55-76页 |
·研究背景及目的 | 第55页 |
·材料及方法 | 第55-59页 |
·主要材料 | 第55-56页 |
·方法 | 第56-59页 |
·结果 | 第59-71页 |
·MSC处理对大鼠血氧的影响 | 第59-61页 |
·肺损伤评分 | 第61-62页 |
·肺组织PMN浸润 | 第62页 |
·BALF中PMN计数 | 第62-64页 |
·BALF中促炎因子及抗炎因子变化 | 第64-66页 |
·全身炎症反应 | 第66-71页 |
·讨论 | 第71-75页 |
·预给予MSC可减轻VILI程度 | 第71-73页 |
·局部及全身促炎因子及抗炎因子变化 | 第73页 |
·促炎因子与PMN肺部浸润的关系 | 第73-75页 |
·结论 | 第75-76页 |
第四章 MSC处理对VILI大鼠PMN功能的影响 | 第76-93页 |
·研究背景及目的 | 第76页 |
·材料与方法 | 第76-80页 |
·主要试剂 | 第76-77页 |
·方法 | 第77-80页 |
·结果 | 第80-86页 |
·PMN表面分子CD11b的表达 | 第80-81页 |
·PMN内NE的活性 | 第81-82页 |
·PMN细胞内ROS产量 | 第82-84页 |
·细胞外ROS | 第84-85页 |
·PMN凋亡率变化 | 第85-86页 |
·讨论 | 第86-92页 |
·NE活性的调节 | 第87-88页 |
·CD11b | 第88-89页 |
·ROS | 第89-90页 |
·凋亡 | 第90-92页 |
·结论 | 第92-93页 |
第五章 MSCs处理对VILI大鼠预后影响及MSC输注后在肺部的变化观察 | 第93-102页 |
·背景及目的 | 第93页 |
·材料及方法 | 第93-97页 |
·主要材料 | 第93-94页 |
·方法 | 第94-97页 |
·结果 | 第97-99页 |
·各组动物预后 | 第97页 |
·MSCs输注后在动物体内的变化观察 | 第97-98页 |
·PCR结果 | 第98-99页 |
·讨论 | 第99-101页 |
·动物预后 | 第99页 |
·MSC输注后的追踪 | 第99-101页 |
·结论 | 第101-102页 |
全文总结 | 第102-103页 |
附彩图 | 第103-107页 |
综述 | 第107-113页 |
参考文献 | 第113-127页 |
发表论文 | 第127-128页 |
致谢 | 第128-130页 |
统计学证明 | 第130页 |