摘要 | 第1-4页 |
Abstract | 第4-10页 |
第1章 文献综述 | 第10-27页 |
·保卫细胞ABA信号转导 | 第10-15页 |
·ABA的感知 | 第10-11页 |
·ABA调节离子通道 | 第11页 |
·ABA信号转导的途径 | 第11-15页 |
·植物细胞H_2O_2及其在气孔运动中的作用 | 第15-19页 |
·植物细胞H_2O_2的产生机制 | 第15-16页 |
·植物细胞H_2O_2清除机制 | 第16-17页 |
·H_2O_2参与调控保卫细胞气孔运动及其信号转导 | 第17-19页 |
·植物细胞NO及其在气孔运动中的作用 | 第19-22页 |
·植物体内NO的来源 | 第19-21页 |
·NO参与调控保卫细胞气孔运动及其信号转导 | 第21-22页 |
·植物中的CO及其作用 | 第22-25页 |
·内源CO的产生及其作用机制 | 第22-23页 |
·植物中CO的生理学作用 | 第23-25页 |
·壳梭孢素 | 第25-26页 |
·FC作用机制研究 | 第25-26页 |
·FC与气孔运动 | 第26页 |
·选题的目的和意义 | 第26-27页 |
第2章 CO参与ABA诱导蚕豆保卫细胞H_2O_2产生和气孔关闭 | 第27-34页 |
·引言 | 第27-28页 |
·材料和方法 | 第28-29页 |
·植物材料 | 第28页 |
·化学试剂 | 第28页 |
·CO气体饱和水溶液的制备 | 第28-29页 |
·表皮条试验 | 第29页 |
·H_2O_2荧光探针装载 | 第29页 |
·激光共聚焦扫描显微镜检测 | 第29页 |
·结果与分析 | 第29-32页 |
·ABA、Ht、CO和H_2O_2对气孔开度的影响 | 第29-30页 |
·ABA、ZnPPIX、Vc、CAT、DPI单独及复合处理对气孔开度的影响 | 第30-31页 |
·Ht、Vc、CAT、DPI单独及复合处理对气孔开度的影响 | 第31页 |
·ABA、ZnPPIX、Vc、CAT、DPI单独及复合处理对保卫细胞内H_2O_2产生的影响 | 第31-32页 |
·Ht、Vc、CAT、DPI单独及复合处理对保卫细胞内源H_2O_2产生的影响 | 第32页 |
·讨论 | 第32-34页 |
第3章 FC抑制ABA诱导蚕豆气孔关闭与其降低保卫细胞H_2O_2水平有关 | 第34-41页 |
·引言 | 第34页 |
·材料与方法 | 第34-36页 |
·植物材料 | 第34-35页 |
·化学试剂 | 第35页 |
·表皮条试验 | 第35页 |
·H_2O_2荧光探针的装载 | 第35-36页 |
·激光共聚焦扫描显微镜检测 | 第36页 |
·结果与分析 | 第36-39页 |
·FC、Vc、CAT、DPI对ABA诱导气孔关闭的影响 | 第36-37页 |
·FC、Vc、CAT、DPI对ABA诱导保卫细胞H_2O_2水平的影响 | 第37页 |
·FC、Vc、CAT、DPI对ABA诱导下已关闭气孔的效应 | 第37-38页 |
·FC、Vc、CAT、DPI对ABA诱导下已产生H_2O_2的影响 | 第38页 |
·FC、Vc、CAT、DPI对外源H_2O_2诱导气孔关闭的影响 | 第38-39页 |
·FC、Vc、CAT、DPI对外源H_2O_2诱导保卫细胞DCF荧光的影响 | 第39页 |
·讨论 | 第39-41页 |
第4章 FC抑制ABA诱导蚕豆气孔关闭与其降低保卫细胞NO水平有关 | 第41-48页 |
·引言 | 第41页 |
·材料与方法 | 第41-43页 |
·植物材料 | 第41页 |
·化学试剂 | 第41-42页 |
·表皮条试验 | 第42页 |
·NO荧光探针的装载 | 第42页 |
·激光共聚焦扫描显微镜检测 | 第42-43页 |
·结果与分析 | 第43-46页 |
·FC、c-PTIO、L-NAME对ABA诱导气孔关闭的影响 | 第43页 |
·FC、c-PTIO、L-NAME对ABA诱导保卫细胞NO水平的影响 | 第43-44页 |
·FC、c-PTIO、L-NAME对ABA诱导下已关闭气孔的效应 | 第44页 |
·FC、c-PTIO、L-NAME对ABA诱导下已产生NO的影响 | 第44-45页 |
·FC、c-PTIO、L-NAME对SNP诱导气孔关闭的影响 | 第45页 |
·FC、c-PTIO、L-NAME对SNP诱导保卫细胞NO荧光的影响 | 第45-46页 |
·讨论 | 第46-48页 |
结论 | 第48-49页 |
参考文献 | 第49-63页 |
图版及图版说明 | 第63-72页 |
致谢 | 第72-73页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第73页 |