| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-10页 |
| 1.前言 | 第10-22页 |
| ·细胞凋亡概述 | 第10-12页 |
| ·细胞凋亡 | 第10页 |
| ·细胞程序性死亡(PCD)与细胞凋亡 | 第10-11页 |
| ·细胞凋亡与细胞坏死的区别 | 第11页 |
| ·细胞凋亡的生化及形态学特征 | 第11-12页 |
| ·诱导细胞凋亡的因子 | 第12页 |
| ·细胞凋亡的检测 | 第12-13页 |
| ·细胞形态学观测 | 第12页 |
| ·DNA凝胶电泳 | 第12页 |
| ·caspase-3活性的检测 | 第12-13页 |
| ·细胞凋亡的信号通路 | 第13-18页 |
| ·哺乳动物细胞凋亡信号通路 | 第13-16页 |
| ·昆虫细胞凋亡信号通路 | 第16-18页 |
| ·无细胞体系 | 第18-19页 |
| ·无细胞体系概述 | 第18-19页 |
| ·无细胞凋亡体系的制备方法 | 第19页 |
| ·半胱氨酸蛋白酶的特征及在细胞凋亡中的作用 | 第19-20页 |
| ·半胱氨酸蛋白酶的发现与特征 | 第19页 |
| ·Caspase酶原的结构及分类 | 第19-20页 |
| ·caspase在细胞凋亡中的作用 | 第20页 |
| ·本研究背景 | 第20-22页 |
| 2.实验材料和方法 | 第22-28页 |
| ·实验材料 | 第22-24页 |
| ·昆虫细胞,苜蓿银纹夜蛾核型多角体病毒 | 第22页 |
| ·昆虫细胞培养基的配制 | 第22页 |
| ·主要药品与试剂 | 第22-23页 |
| ·溶液的配制 | 第23页 |
| ·实验所用仪器 | 第23-24页 |
| ·实验方法 | 第24-28页 |
| ·昆虫细胞培养 | 第24页 |
| ·甜菜夜蛾人工饲养、感染与病毒的虫体活化 | 第24页 |
| ·AcMNPV感染滴度的测定(TCID_(50)) | 第24页 |
| ·对照组即病毒感染Sl-1细胞的处理 | 第24-25页 |
| ·Sl-1细胞无细胞体系的制备 | 第25页 |
| ·Sl-1细胞核的制备 | 第25页 |
| ·细胞色素C将无细胞体系激活为凋亡体系过程其阈值的确定 | 第25页 |
| ·无细胞凋亡体系对Sl-1细胞核的诱导及鉴定 | 第25-26页 |
| ·Sl-1细胞核在无细胞凋亡体系中的凋亡形态学观察 | 第26页 |
| ·细胞核DNA的提取与电泳分析 | 第26页 |
| ·用荧光定量分析法检测Sl-1细胞核凋亡后caspase-3的活性 | 第26-28页 |
| 3.实验结果与分析 | 第28-35页 |
| ·AcMNPV诱导Sl-1细胞凋亡的形态学观察 | 第28-29页 |
| ·Sl-1细胞核在无细胞凋亡体系中的凋亡形态学观察 | 第29-32页 |
| ·Sl-1细胞核DNA在凋亡体系中特异降解形成DNA梯形条带 | 第32-33页 |
| ·用荧光分光光度法检测caspase-3的活性 | 第33-35页 |
| 4.讨论 | 第35-37页 |
| ·无细胞体系在细胞凋亡中的优越性 | 第35页 |
| ·cytc与细胞凋亡 | 第35页 |
| ·外源加入的细胞色素C在非细胞体系中诱导Sl-1细胞核凋亡 | 第35-36页 |
| ·外源加入的cytc在无细胞体系中对caspase-3活性的影响 | 第36页 |
| ·总结 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-41页 |
| 致谢 | 第41页 |
