| 摘要 | 第4-7页 |
| abstract | 第7-10页 |
| 引言 | 第13-19页 |
| 第一章 金鱼Tgf2转座元件的插入诱变研究 | 第19-43页 |
| 1.1 实验材料、主要仪器、化学和生物试剂 | 第19-21页 |
| 1.1.1 实验动物与实验材料 | 第19页 |
| 1.1.2 主要仪器 | 第19-20页 |
| 1.1.3 主要试剂 | 第20-21页 |
| 1.2 实验方法 | 第21-30页 |
| 1.2.1 试剂配方 | 第21-22页 |
| 1.2.2 Tgf2转座酶cDNA片段的获得 | 第22-23页 |
| 1.2.3 构建pMD19-Tgf2TP重组质粒 | 第23-25页 |
| 1.2.4 构建pEGFP-Tgf2TP重组质粒 | 第25页 |
| 1.2.5 构建pEGFP-TP-SV40NLS重组质粒 | 第25-26页 |
| 1.2.6 转座酶mRNA制备 | 第26-28页 |
| 1.2.7 细胞实验(该部分实验均在超净工作台内进行) | 第28-30页 |
| 1.3 实验结果 | 第30-40页 |
| 1.3.1 构建pEGFP-TP质粒 | 第30-32页 |
| 1.3.2 构建pEGFP-TP-SV40NLS质粒 | 第32-34页 |
| 1.3.3 斑马鱼显微注射结果 | 第34-36页 |
| 1.3.4 整合效率统计 | 第36-38页 |
| 1.3.5 细胞转染 | 第38-39页 |
| 1.3.6 转染效率分析 | 第39-40页 |
| 1.4 讨论 | 第40-43页 |
| 第二章 团头鲂HIF3α的核定位分析 | 第43-53页 |
| 2.1 实验材料、仪器和生物化学试剂 | 第43页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第43页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第43页 |
| 2.1.3 主要的生物试剂和化学试剂 | 第43页 |
| 2.2 实验方法 | 第43-44页 |
| 2.2.1 序列比对分析 | 第43页 |
| 2.2.2 细胞培养和细胞转染实验 | 第43页 |
| 2.2.3 低氧模拟实验 | 第43-44页 |
| 2.3 实验结果 | 第44-49页 |
| 2.3.1 团头鲂HIF3α的结构域 | 第44-46页 |
| 2.3.2 团头鲂HIF3α核定位 | 第46-49页 |
| 2.4 讨论 | 第49-53页 |
| 结论与展望 | 第53-55页 |
| 参考文献 | 第55-64页 |
| 附录：英文缩略词表 | 第64-65页 |
| 硕士期间发表的论文 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
