| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1 绪论 | 第10-18页 |
| 1.1 鹿茸的概述 | 第10页 |
| 1.2 鹿茸活性成分国内外研究现状 | 第10-11页 |
| 1.3 鹿茸活性多肽的研究现状 | 第11-15页 |
| 1.3.1 活性多肽的简介 | 第11-12页 |
| 1.3.2 鹿茸活性多肽的功能介绍 | 第12-14页 |
| 1.3.3 鹿茸活性多肽的研究进展 | 第14-15页 |
| 1.4 鹿茸生物活性肽制备、分离纯化及分析方法 | 第15-16页 |
| 1.4.1 鹿茸活性多肽的制备方法 | 第15页 |
| 1.4.2 鹿茸活性多肽的分离纯化方法 | 第15-16页 |
| 1.4.3 鹿茸活性多肽的分析方法 | 第16页 |
| 1.5 研究的目的及意义 | 第16页 |
| 1.6 研究的主要内容 | 第16-18页 |
| 2 双酶法制备马鹿茸降血糖肽研究 | 第18-32页 |
| 2.1 引言 | 第18页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第18-19页 |
| 2.2.1 材料 | 第18页 |
| 2.2.2 仪器和设备 | 第18-19页 |
| 2.3 实验方法 | 第19-21页 |
| 2.3.1 马鹿茸冻干粉的制备 | 第19页 |
| 2.3.2 蛋白酶酶活力测定 | 第19页 |
| 2.3.3 蛋白酶的选择方法 | 第19页 |
| 2.3.4 双酶水解实验 | 第19页 |
| 2.3.5 水解度测定 | 第19-20页 |
| 2.3.6 蛋白质回收率测定 | 第20页 |
| 2.3.7 α-葡萄糖苷酶抑制率测定 | 第20页 |
| 2.3.8 数据处理 | 第20-21页 |
| 2.4 结果与分析 | 第21-31页 |
| 2.4.1 蛋白酶酶活力测定结果 | 第21-22页 |
| 2.4.2 马鹿茸总肽键数h_(tot)值的确定 | 第22页 |
| 2.4.3 蛋白酶的选择 | 第22-23页 |
| 2.4.4 酶解顺序的测定 | 第23-24页 |
| 2.4.5 双酶水解实验 | 第24-29页 |
| 2.4.6 双酶水解正交实验 | 第29-31页 |
| 2.4.7 不同浓度双酶酶解终产物对α-葡萄糖苷酶抑制率的影响结果 | 第31页 |
| 2.5 本章小结 | 第31-32页 |
| 3 马鹿茸降血糖肽的分离纯化研究 | 第32-41页 |
| 3.1 引言 | 第32页 |
| 3.2 材料与仪器 | 第32页 |
| 3.2.1 材料 | 第32页 |
| 3.2.2 仪器和设备 | 第32页 |
| 3.3 实验方法 | 第32-33页 |
| 3.3.1 马鹿茸降血糖肽超滤 | 第32-33页 |
| 3.3.2 马鹿茸降血糖肽凝胶色谱分离 | 第33页 |
| 3.3.3 数据处理 | 第33页 |
| 3.4 结果与分析 | 第33-40页 |
| 3.4.1 超滤工艺参数对膜通量的影响 | 第33-34页 |
| 3.4.2 超滤离心管的清洗 | 第34页 |
| 3.4.3 超滤后两组分对α-葡萄糖苷酶抑制率的影响 | 第34-35页 |
| 3.4.4 超滤后小分子多肽的紫外最大吸收波长的测定 | 第35页 |
| 3.4.5 Sephdex LH-20凝胶色谱分离条件优化 | 第35-40页 |
| 3.5 本章小结 | 第40-41页 |
| 4 马鹿茸降血糖肽对HepG2细胞和RINm5F细胞影响的研究 | 第41-52页 |
| 4.1 引言 | 第41页 |
| 4.2 材料与仪器 | 第41-42页 |
| 4.2.1 材料 | 第41-42页 |
| 4.2.2 仪器和设备 | 第42页 |
| 4.3 实验方法 | 第42-43页 |
| 4.3.1 细胞复苏 | 第42页 |
| 4.3.2 细胞培养 | 第42页 |
| 4.3.3 HepG2细胞胰岛素抵抗模型的建立 | 第42页 |
| 4.3.4 HepG2细胞的葡萄糖消耗作用及细胞增殖作用 | 第42-43页 |
| 4.3.5 胰岛β细胞增殖作用 | 第43页 |
| 4.3.6 STZ损伤的胰岛β细胞修复作用 | 第43页 |
| 4.3.7 数据处理 | 第43页 |
| 4.4 结果与分析 | 第43-50页 |
| 4.4.1 HepG2细胞胰岛素抵抗模型的建立 | 第43-44页 |
| 4.4.2 HepG2细胞的葡萄糖消耗作用及细胞增殖作用 | 第44-48页 |
| 4.4.3 胰岛β细胞增殖作用 | 第48-50页 |
| 4.4.4 STZ损伤的胰岛β细胞修复作用 | 第50页 |
| 4.5 本章小结 | 第50-52页 |
| 5 马鹿茸降血糖肽分子量测定及氨基酸序列分析 | 第52-58页 |
| 5.1 引言 | 第52页 |
| 5.2 材料与仪器 | 第52-53页 |
| 5.2.1 材料 | 第52页 |
| 5.2.2 仪器和设备 | 第52-53页 |
| 5.3 实验方法 | 第53-56页 |
| 5.3.1 Tricine-SDS-PAGE凝胶电泳 | 第53-55页 |
| 5.3.2 马鹿茸降血糖肽纯化组分PⅢ的氨基酸序列测定 | 第55-56页 |
| 5.4 结果与分析 | 第56-57页 |
| 5.4.1 Tricine-SDS-PAGE凝胶电泳结果 | 第56页 |
| 5.4.2 马鹿茸降血糖肽纯化组分PⅢ的氨基酸序列 | 第56-57页 |
| 5.5 本章小结 | 第57-58页 |
| 结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-65页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
