| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-8页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 第一章 文献研究 | 第14-23页 |
| 1.1 食管癌MDR | 第14-17页 |
| 1.1.1 食管癌MDR有关基因和蛋白 | 第14-15页 |
| 1.1.2 食管癌MDR机制及治疗的相关研究进展 | 第15-17页 |
| 1.2 ATF5 特征与肿瘤耐药 | 第17-19页 |
| 1.2.1 ATF5的生理机能 | 第17-18页 |
| 1.2.2 ATF5在肿瘤中的功能作用 | 第18-19页 |
| 1.2.3 ATF5蛋白与肿瘤药物敏感性 | 第19页 |
| 1.3 STAT3的特征及其与肿瘤耐药 | 第19-21页 |
| 1.3.1 STAT3的特征 | 第19页 |
| 1.3.2 STAT3在肿瘤中的作用 | 第19-21页 |
| 1.3.3 STAT3与肿瘤耐药 | 第21页 |
| 1.4 ATF5和SIAT3在食管癌MDR中的关系及作用 | 第21-23页 |
| 第二章 ATF5在ESCC MDR中的作用研究 | 第23-29页 |
| 2.1 材料和仪器 | 第23-24页 |
| 2.1.1 癌细胞和主要试剂 | 第23页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第23-24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-27页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第24页 |
| 2.2.2 ATF5过表达质粒提取及测序 | 第24-25页 |
| 2.2.3 蛋白质免疫印迹实验(Western Blot,WB) | 第25-26页 |
| 2.2.4 ATF5低表达组的构建 | 第26页 |
| 2.2.5 质粒转染细胞 | 第26页 |
| 2.2.6 MTT药敏实验 | 第26-27页 |
| 2.2.7 DAPI染色实验 | 第27页 |
| 2.2.8 平板克隆形成测凋亡实验 | 第27页 |
| 2.2.9 统计学处理 | 第27页 |
| 2.3 实验结果 | 第27-28页 |
| 2.3.1 ATF5 pcDNA3.1阿质粒测序后结果及转染后荧光验证 | 第27-28页 |
| 2.4 讨论 | 第28-29页 |
| 第三章 ATF5与STAT3的相关性研究 | 第29-33页 |
| 3.1 实验材料和仪器 | 第29-30页 |
| 3.1.1 实验细胞和主要试剂 | 第29页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第29-30页 |
| 3.2 实验方法 | 第30-31页 |
| 3.2.1 细胞培养 | 第30页 |
| 3.2.2 ATF5过表达质粒提取及测序 | 第30页 |
| 3.2.3 Western Blot | 第30页 |
| 3.2.4 ATF5低表达模型的构建 | 第30页 |
| 3.2.5 质粒转染细胞 | 第30页 |
| 3.2.6 统计分析 | 第30-31页 |
| 3.3 实验结果 | 第31-32页 |
| 3.3.1 不同组Eca109细胞ATF5表达情况 | 第31页 |
| 3.3.2 不同ATF5表达量细胞组STAT3蛋白表达情况 | 第31-32页 |
| 3.4 讨论 | 第32-33页 |
| 第四章 STAT3对ATF5介导的ESCC MDR的作用研究 | 第33-37页 |
| 4.1 材料和仪器 | 第33-34页 |
| 4.1.1 细胞和主剂要试 | 第33页 |
| 4.1.2 主要仪器 | 第33-34页 |
| 4.2 实验方法 | 第34-35页 |
| 4.2.1 细胞培养 | 第34页 |
| 4.2.2 ATF5过表达质粒提取、测序 | 第34页 |
| 4.2.3 Western Blot | 第34页 |
| 4.2.4 质粒转染细胞实验 | 第34页 |
| 4.2.5 平板克隆实验 | 第34页 |
| 4.2.6 DAPI染色实验 | 第34页 |
| 4.2.7 流式细胞术 | 第34-35页 |
| 4.2.8 统计分析 | 第35页 |
| 4.3 实验结果 | 第35-37页 |
| 4.3.1 ATF5高表达的食管癌细胞在下调STAT3表达后联合顺铂作用下平板克隆形成数 | 第35-37页 |
| 附录 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-48页 |
| 在校期间发表论文情况 | 第48-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
| 审核证明 | 第50页 |
