摘要 | 第4-7页 |
Abstract | 第7-10页 |
第一章 序言 | 第16-28页 |
1.1 研究背景 | 第16-17页 |
1.1.1 糖脂代谢病 | 第16页 |
1.1.2 中医药复方防治糖脂代谢病 | 第16-17页 |
1.2 文献综述 | 第17-25页 |
1.2.1 脂肪组织对胰岛素敏感性的影响 | 第17-20页 |
1.2.2 脂肪组织适应性产热与巨噬细胞相关的机制研究 | 第20-22页 |
1.2.3 脂肪代谢障碍模型的研究进展 | 第22-25页 |
1.3 研究路线 | 第25-27页 |
1.4 小结 | 第27-28页 |
第二章 aP2-SREBP1c小鼠的表型研究 | 第28-48页 |
2.1 前言 | 第28页 |
2.2 实验材料 | 第28-30页 |
2.2.1 实验动物 | 第28页 |
2.2.2 实验仪器 | 第28-29页 |
2.2.3 实验试剂 | 第29-30页 |
2.3 实验方法 | 第30-37页 |
2.3.1 转基因动物繁殖 | 第30页 |
2.3.2 动物分组 | 第30页 |
2.3.3 脂肪组织含量检测 | 第30页 |
2.3.4 口服糖耐量实验(OralGlucoseToleranceTest,OGTT) | 第30页 |
2.3.5 胰岛素抵抗指数 | 第30-31页 |
2.3.6 HE染色 | 第31页 |
2.3.7 糖原PAS染色 | 第31-32页 |
2.3.8 流式细胞术检测脂肪组织SVF细胞 | 第32页 |
2.3.9 Trizol法提取总RNA | 第32-33页 |
2.3.10 总RNA逆转录反应 | 第33页 |
2.3.11 RT-PCR | 第33-34页 |
2.3.12 引物序列 | 第34页 |
2.3.13 棕色脂肪细胞线粒体耗氧量实验 | 第34-35页 |
2.3.14 GC-MS法分析肝脏脂肪酸组分方法 | 第35-36页 |
2.3.15 统计学处理方法 | 第36-37页 |
2.4 实验结果 | 第37-46页 |
2.4.1 aP2-SREBP1c小鼠的糖脂代谢状况 | 第37-38页 |
2.4.2 aP2-SREBP1c小鼠的体脂水平 | 第38页 |
2.4.3 aP2-SREBP1c小鼠的糖耐量 | 第38-40页 |
2.4.4 aP2-SREBP1c小鼠的胰岛素水平、HOMA-IR | 第40页 |
2.4.5 aP2-SREBP1c小鼠体内的脂肪酸含量 | 第40-41页 |
2.4.6 aP2-SREBP1c脂肪组织特异性过表达对小鼠棕色脂肪的影响 | 第41-43页 |
2.4.7 aP2-SREBP1c脂肪组织特异性过表达对肝脏的影响 | 第43-44页 |
2.4.8 aP2-SREBP1c脂肪组织特异性过表达对小鼠脂肪组织巨噬细胞极化的影响 | 第44-46页 |
2.4.9 aP2-SREBP1c脂肪组织特异性过表达对小鼠脂肪组织炎症状态的影响 | 第46页 |
2.5 小结 | 第46-48页 |
第三章 冷刺激对aP2-SREBP1c小鼠的影响 | 第48-60页 |
3.1 前言 | 第48页 |
3.2 实验材料 | 第48-49页 |
3.2.1 实验动物 | 第48页 |
3.2.2 实验仪器 | 第48-49页 |
3.2.3 实验试剂 | 第49页 |
3.3 实验方法 | 第49-51页 |
3.3.1 动物分组 | 第49-50页 |
3.3.2 冷刺激干预方法 | 第50页 |
3.3.3 脂肪组织含量检测 | 第50页 |
3.3.4 口服糖耐量实验(OralGlucoseToleranceTest,OGTT) | 第50页 |
3.3.5 胰岛素抵抗指数 | 第50页 |
3.3.6 HE染色 | 第50页 |
3.3.7 RT-PCR检测实验 | 第50页 |
3.3.8 引物序列 | 第50-51页 |
3.3.9 统计学处理方法 | 第51页 |
3.4 实验结果 | 第51-59页 |
3.4.1 冷刺激对aP2-SREBP1c小鼠糖脂代谢的影响 | 第51-52页 |
3.4.2 冷刺激对aP2-SREBP1c小鼠中心体温的影响 | 第52-53页 |
3.4.3 冷刺激对aP2-SREBP1c小鼠体脂的影响 | 第53-54页 |
3.4.4 冷刺激对aP2-SREBP1c小鼠糖耐量的影响 | 第54-55页 |
3.4.5 冷刺激对aP2-SREBP1c小鼠胰岛素水平、HOMA-IR的影响 | 第55页 |
3.4.6 冷刺激对aP2-SREBP1c小鼠脂肪组织状态的影响 | 第55-56页 |
3.4.7 冷刺激对aP2-SREBP1c小鼠脂肪组织巨噬细胞极化的影响 | 第56-58页 |
3.4.8 冷刺激对aP2-SREBP1c小鼠脂肪组织脂肪因子的影响 | 第58-59页 |
3.5 小结 | 第59-60页 |
第四章 基于脂肪组织巨噬细胞极化,复方贞术调脂方改善aP2-SREBP1c小鼠胰岛素抵抗的药效及机制研究 | 第60-77页 |
4.1 前言 | 第60页 |
4.2 实验材料 | 第60-62页 |
4.2.1 实验动物 | 第60页 |
4.2.2 干预药物 | 第60-61页 |
4.2.3 实验仪器 | 第61页 |
4.2.4 实验试剂 | 第61-62页 |
4.3 实验方法 | 第62-64页 |
4.3.1 动物分组 | 第62页 |
4.3.2 给药干预方法 | 第62-63页 |
4.3.3 脂肪组织含量检测 | 第63页 |
4.3.4 口服糖耐量实验(OralGlucoseToleranceTest,OGTT) | 第63页 |
4.3.5 胰岛素抵抗指数 | 第63页 |
4.3.6 HE染色 | 第63页 |
4.3.7 流式细胞术检测脂肪组织SVF细胞 | 第63页 |
4.3.8 Trizol法提取总RNA | 第63页 |
4.3.9 总RNA逆转录反应 | 第63页 |
4.3.10 RT-PCR | 第63页 |
4.3.11 引物序列 | 第63-64页 |
4.3.12 棕色脂肪细胞线粒体耗氧量实验 | 第64页 |
4.3.13 GC-MS法分析肝脏脂肪酸组分方法 | 第64页 |
4.3.14 统计学处理方法 | 第64页 |
4.4 实验结果 | 第64-75页 |
4.4.1 FTZ对aP2-SREBP1c小鼠糖脂代谢的影响 | 第64-65页 |
4.4.2 FTZ对aP2-SREBP1c小鼠糖耐量的影响 | 第65-66页 |
4.4.3 FTZ对aP2-SREBP1c小鼠胰岛素水平、HOMA-IR的影响 | 第66-67页 |
4.4.4 FTZ对aP2-SREBP1c小鼠脂质异位沉积的影响 | 第67-70页 |
4.4.5 FTZ对aP2-SREBP1c小鼠棕色脂肪细胞呼吸率的影响 | 第70-71页 |
4.4.6 FTZ对aP2-SREBP1c小鼠脂肪组织巨噬细胞极化的影响 | 第71-74页 |
4.4.7 FTZ对aP2-SREBP1c小鼠脂肪组织炎症因子水平的影响 | 第74-75页 |
4.4.8 FTZ对aP2-SREBP1c小鼠脂肪组织脂肪调节因子的影响 | 第75页 |
4.5 小结 | 第75-77页 |
第五章 冷刺激条件下,FTZ改善aP2-SREBP1c小鼠胰岛素抵抗的药效研究 | 第77-88页 |
5.1 前言 | 第77页 |
5.2 实验材料 | 第77-78页 |
5.2.1 实验动物 | 第77页 |
5.2.2 实验仪器 | 第77-78页 |
5.3 实验方法 | 第78-80页 |
5.3.1 动物分组 | 第78页 |
5.3.2 给药干预方法 | 第78页 |
5.3.3 冷刺激干预方法 | 第78-79页 |
5.3.4 脂肪组织含量检测 | 第79页 |
5.3.5 口服糖耐量实验(OralGlucoseToleranceTest,OGTT) | 第79页 |
5.3.6 胰岛素抵抗指数 | 第79页 |
5.3.7 HE染色 | 第79页 |
5.3.8 RT-PCR检测实验 | 第79页 |
5.3.9 引物序列 | 第79-80页 |
5.3.10 统计学处理方法 | 第80页 |
5.4 实验结果 | 第80-87页 |
5.4.1 冷刺激条件下,FTZ对aP2-SREBP1c小鼠体温变化的影响 | 第80-81页 |
5.4.2 冷刺激条件下,FTZ对aP2-SREBP1c小鼠体脂的影响 | 第81-82页 |
5.4.3 冷刺激条件下,FTZ对aP2-SREBP1c小鼠脂肪组织的影响 | 第82-84页 |
5.4.4 冷刺激条件下,FTZ对aP2-SREBP1c小鼠脂肪组织巨噬细胞极化的影响 | 第84-85页 |
5.4.5 冷刺激条件下,FTZ对aP2-SREBP1c小鼠脂肪组织炎症因子的影响 | 第85-86页 |
5.4.6 冷刺激条件下,FTZ对aP2-SREBP1c小鼠脂肪组织脂肪调节因子的影响 | 第86-87页 |
5.5 小结 | 第87-88页 |
第六章 结论与展望 | 第88-90页 |
6.1 结论 | 第88页 |
6.2 展望 | 第88-90页 |
参考文献 | 第90-95页 |
附录 | 第95-98页 |
致谢 | 第98页 |