| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 缩略语表 | 第12-14页 |
| 文中水生动物名录 | 第14-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-27页 |
| 1.1 补体系统 | 第15-18页 |
| 1.1.1 经典途径 | 第16页 |
| 1.1.2 旁路途径 | 第16-17页 |
| 1.1.3 凝集素途径 | 第17-18页 |
| 1.2 硬骨鱼类补体系统的功能 | 第18-20页 |
| 1.2.1 细胞溶解 | 第18-19页 |
| 1.2.2 调理作用 | 第19页 |
| 1.2.3 炎症反应 | 第19-20页 |
| 1.3 补体组成成分 | 第20-25页 |
| 1.3.1 C1q/MBL-like家族 | 第21-22页 |
| 1.3.2 C1r/C1s/MASP家族 | 第22页 |
| 1.3.3 C2/BF-like分子 | 第22-23页 |
| 1.3.4 C3/C4/C5家族 | 第23-25页 |
| 1.3.5 溶解途径的补体成分 | 第25页 |
| 1.4 本研究的目的及意义 | 第25-27页 |
| 第二章 泥鳅补体C3基因的克隆与m RNA的组织分布 | 第27-47页 |
| 2.1 动物与材料 | 第27-28页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第27页 |
| 2.1.2 仪器与设备 | 第27页 |
| 2.1.3 药品与试剂 | 第27-28页 |
| 2.2 实验方法 | 第28-34页 |
| 2.2.1 RNA的提取和c DNA模板的制备 | 第28-29页 |
| 2.2.2 泥鳅补体C3基因片段扩增和测序 | 第29-31页 |
| 2.2.3 RACE-PCR | 第31-34页 |
| 2.3 生物信息学分析及系统进化树的构建 | 第34-35页 |
| 2.4 荧光定量PCR | 第35-36页 |
| 2.4.1 健康泥鳅不同组织样品的获得 | 第35页 |
| 2.4.2 RNA的提取和c DNA模板的制备 | 第35页 |
| 2.4.3 实时荧光定量PCR | 第35-36页 |
| 2.4.4 统计分析 | 第36页 |
| 2.5 结果与分析 | 第36-45页 |
| 2.5.1 补体C3-1 基因c DNA全长与结构域分析 | 第36-41页 |
| 2.5.2 补体C3-1 的同源比对和进化树分析 | 第41-45页 |
| 2.5.3 3种C3亚型m RNA在健康泥鳅不同组织中的表达 | 第45页 |
| 2.6 讨论 | 第45-47页 |
| 第三章 嗜水气单胞菌诱导泥鳅补体C3的表达研究 | 第47-59页 |
| 3.1 材料与方法 | 第47-50页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第47页 |
| 3.1.2 嗜水气单胞菌感染实验 | 第47-48页 |
| 3.1.3 苏木精/伊红染色（HE染色） | 第48-49页 |
| 3.1.4 荧光定量PCR（qPCR） | 第49-50页 |
| 3.2 结果与分析 | 第50-57页 |
| 3.2.1 皮肤和鳃受到嗜水气单胞菌感染以后的形态变化 | 第50-52页 |
| 3.2.2 嗜水气单胞菌感染以后3种C3亚型的表达 | 第52-54页 |
| 3.2.3 嗜水气单胞菌感染以后一些补体相关基因的表达 | 第54-57页 |
| 3.3 讨论 | 第57-59页 |
| 参考文献 | 第59-66页 |
| 硕士期间发表的论文 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67页 |
