| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第0章 引言 | 第13-17页 |
| 0.1 小胶质细胞(MG) | 第13-14页 |
| 0.1.1 小胶质细胞的来源与功能 | 第13页 |
| 0.1.2 小胶质细胞与阿尔茨海默病 | 第13-14页 |
| 0.2 硒与硒蛋白 | 第14-16页 |
| 0.2.1 硒 | 第14-15页 |
| 0.2.2 硒蛋白与AD的关系 | 第15-16页 |
| 0.3 CRISPR-Cas9技术 | 第16页 |
| 0.4 研究目的与方向 | 第16-17页 |
| 第1章 IP_3R敲减及其激动剂和抑制剂对mSelK过表达/敲减引起小胶质细胞吞噬、迁移能力及Ca~(2+)浓度变化的影响 | 第17-42页 |
| 1.1 实验材料 | 第17-19页 |
| 1.1.1 实验细胞和病毒 | 第17-18页 |
| 1.1.2 实验用药品与试剂 | 第18页 |
| 1.1.3 实验仪器 | 第18-19页 |
| 1.2 实验方法 | 第19-32页 |
| 1.2.1 细胞培养 | 第19-22页 |
| 1.2.2 腺病毒载体的构建及扩增 | 第22-23页 |
| 1.2.3 Western Blot验证腺病毒侵染效果 | 第23-28页 |
| 1.2.4 划痕实验检测迁移能力 | 第28-29页 |
| 1.2.5 吞噬能力的测定 | 第29页 |
| 1.2.6 游离钙的测定 | 第29-31页 |
| 1.2.7 统计学方法 | 第31-32页 |
| 1.3 实验结果 | 第32-40页 |
| 1.3.1 Western Blot结果 | 第32-34页 |
| 1.3.2 迁移能力测定结果 | 第34-36页 |
| 1.3.3 吞噬能力测定结果 | 第36-38页 |
| 1.3.4 测钙结果 | 第38-40页 |
| 1.4 分析与讨论 | 第40-41页 |
| 1.5 小结 | 第41-42页 |
| 第2章 AlCl_3和Aβ对阿尔茨海默病小鼠脑内硒蛋白mSelK的影响 | 第42-55页 |
| 2.1 实验材料 | 第42-43页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第42页 |
| 2.1.2 实验药品与试剂 | 第42-43页 |
| 2.1.3 实验仪器与设备 | 第43页 |
| 2.2 实验方法 | 第43-48页 |
| 2.2.1 小鼠脑注射预实验 | 第43-44页 |
| 2.2.2 小鼠脑注射实验 | 第44页 |
| 2.2.3 小鼠水迷宫实验 | 第44页 |
| 2.2.4 免疫组化染色 | 第44-45页 |
| 2.2.5 Western Blot验证Al~(3+)和Aβ对硒蛋白表达量的影响 | 第45-48页 |
| 2.3 实验结果 | 第48-54页 |
| 2.3.1 脑室注射AlCl_3水迷宫结果 | 第48-49页 |
| 2.3.2 脑室注射AlCl_3小鼠脑切片的HE染色结果 | 第49-50页 |
| 2.3.3 脑室注射Aβ1-42小鼠脑切片的IBA-1染色结果 | 第50-51页 |
| 2.3.4 Western Blot结果 | 第51-54页 |
| 2.4 分析与讨论 | 第54页 |
| 2.5 小结 | 第54-55页 |
| 第3章 mSelK基因敲除小鼠的构建及鉴定 | 第55-66页 |
| 3.1 实验材料 | 第55-56页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第55页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第55-56页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第56页 |
| 3.2 实验方法 | 第56-61页 |
| 3.2.1 基因敲除小鼠的构建 | 第56-57页 |
| 3.2.2 基因敲除小鼠的繁育 | 第57页 |
| 3.2.3 基因敲除小鼠的鉴定 | 第57-59页 |
| 3.2.4 基因敲除小鼠的验证 | 第59-61页 |
| 3.3 实验结果 | 第61-64页 |
| 3.3.1 琼脂糖凝胶电泳结果 | 第61-62页 |
| 3.3.2 合笼、繁育及基因型鉴定情况 | 第62-64页 |
| 3.4 分析与讨论 | 第64-65页 |
| 3.5 小结 | 第65-66页 |
| 结论 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-72页 |
| 攻读学位期间发表学术论文及参加科研情况 | 第72-73页 |
