| 中文摘要 | 第5-8页 |
| abstract | 第8-10页 |
| 第一章 引言 | 第13-24页 |
| 1.1 生长抑制因子4(ING4)和白细胞介素-24(IL-24)基因及其抑癌作用 | 第13-15页 |
| 1.2 基因传递载体 | 第15-17页 |
| 1.3 肝癌细胞的靶向性配体 | 第17-18页 |
| 1.4 柞蚕丝素蛋白及其作为基因载体的研究 | 第18-20页 |
| 1.5 本文的研究目的和内容 | 第20-24页 |
| 第二章 聚乙烯亚胺对柞蚕丝素蛋白的阳离子化改性 | 第24-32页 |
| 2.1 材料与方法 | 第24-26页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第26-31页 |
| 2.2.1 柞蚕丝素蛋白与聚乙烯亚胺的反应过程 | 第26-27页 |
| 2.2.2 阳离子化柞蚕丝素蛋白的Zeta电位 | 第27-28页 |
| 2.2.3 阳离子化柞蚕丝素蛋白的等电点 | 第28-29页 |
| 2.2.4 阳离子化柞蚕丝素蛋白的红外吸收光谱 | 第29-30页 |
| 2.2.5 阳离子化柞蚕丝素蛋白的核磁共振氢谱 | 第30-31页 |
| 2.3 本章小结 | 第31-32页 |
| 第三章 HCBP1肽修饰阳离子化柞蚕丝素蛋白 | 第32-38页 |
| 3.1 材料与方法 | 第32-34页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第34-37页 |
| 3.2.1 HCBP1肽修饰阳离子化柞蚕丝素蛋白的反应过程 | 第34-35页 |
| 3.2.2 靶向阳离子化柞蚕丝素蛋白的Zeta电位 | 第35-36页 |
| 3.2.3 靶向阳离子化柞蚕丝素蛋白的红外吸收光谱 | 第36-37页 |
| 3.2.4 靶向阳离子化柞蚕丝素蛋白的核磁共振氢谱 | 第37页 |
| 3.3 本章小结 | 第37-38页 |
| 第四章 靶向阳离子化柞蚕丝素蛋白/PDNA复合物的制备和表征 | 第38-51页 |
| 4.1 材料与方法 | 第38-42页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第42-50页 |
| 4.2.1 复合物的琼脂糖凝胶阻滞电泳 | 第42-43页 |
| 4.2.2 复合物的Zeta电位 | 第43-44页 |
| 4.2.3 复合物的粒径 | 第44-45页 |
| 4.2.4 复合物的形貌观察 | 第45-50页 |
| 4.3 本章小结 | 第50-51页 |
| 第五章 靶向阳离子化柞蚕丝素蛋白作为ING4-IL-24双基因共表达质粒传递载体的体外实验 | 第51-63页 |
| 5.1 材料与方法 | 第51页 |
| 5.2 实验方法 | 第51-55页 |
| 5.2.1 HepG2及L-02细胞培养 | 第51-53页 |
| 5.2.2 体外复合物转染HepG2和L-02细胞的研究 | 第53-55页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第55-61页 |
| 5.3.1 复合物转染HepG2和L-02细胞24h后的激光共聚焦观察 | 第55-59页 |
| 5.3.2 CASFP/pDNA复合物对HepG2和L-02细胞活力的影响 | 第59-61页 |
| 5.3.3 CASFP/pDNA复合物转染HepG2细胞的转染效率 | 第61页 |
| 5.4 本章小结 | 第61-63页 |
| 第六章 结语 | 第63-66页 |
| 6.1 全文结论 | 第63-64页 |
| 6.2 本文的创新点 | 第64页 |
| 6.3 本文的不足之处 | 第64页 |
| 6.4 今后的进一步研究计划 | 第64-66页 |
| 参考文献 | 第66-75页 |
| 攻读学位期间本人出版或公开的论文 | 第75-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
