摘要 | 第6-8页 |
ABSTRACT | 第8-9页 |
缩写词 | 第13-15页 |
第一章 绪论 | 第15-38页 |
1.1 叶面微生物的多样性 | 第15-17页 |
1.2 叶际微生物诱导的气孔免疫现象 | 第17-18页 |
1.3 酵母对植物生长的影响 | 第18-21页 |
1.4 海藻糖对植物生长的影响 | 第21-24页 |
1.5 气孔保卫细胞内的信号转导途径 | 第24-32页 |
1.5.1 H_2O_2和NO在气孔运动中的作用 | 第25-27页 |
1.5.2 Ca~(2+)在气孔运动中的作用 | 第27-28页 |
1.5.3 植物激素在气孔运动中的作用 | 第28-32页 |
1.6 光合作用与气孔运动的关系 | 第32-33页 |
1.7 抗蒸腾剂研发的现状 | 第33-35页 |
1.8 科学问题的提出以及理论假设 | 第35-38页 |
1.8.1 本文拟研究的科学问题 | 第35-36页 |
1.8.2 科学假说及其可检验的预测 | 第36-38页 |
第二章 材料与方法 | 第38-48页 |
2.1 实验设计 | 第38-41页 |
2.1.1 酵母对植物光合作用的影响 | 第38页 |
2.1.2 酵母对植物水分利用效率的影响 | 第38页 |
2.1.3 酵母对水稻抗旱性的影响 | 第38-39页 |
2.1.4 酵母对蚕豆气孔开度的影响 | 第39-40页 |
2.1.5 海藻糖对气孔开度以及植物光合作用的影响 | 第40页 |
2.1.6 基于气孔免疫响应的新型抗蒸腾剂的研发 | 第40-41页 |
2.2 实验材料的培养 | 第41-43页 |
2.2.1 蚕豆的种植 | 第41页 |
2.2.2 水稻的种植 | 第41-42页 |
2.2.3 番茄的种植 | 第42页 |
2.2.4 酵母的培养 | 第42-43页 |
2.4 实验方法 | 第43-48页 |
2.4.1 测定土壤最大持水量 | 第43页 |
2.4.2 土壤含水量的测定 | 第43页 |
2.4.3 表皮条气孔开度的撕取 | 第43-44页 |
2.4.4 气孔开度的测量 | 第44页 |
2.4.5 表皮条保卫细胞H_2O_2含量的测定 | 第44-45页 |
2.4.6 H_2O_2的组织化学定位 | 第45页 |
2.4.7 O_2~-的组织化学定位 | 第45-46页 |
2.4.8 植物气体交换参数的测定 | 第46页 |
2.4.9 植物叶绿素荧光参数的测定 | 第46-47页 |
2.4.10 水稻生物量和产量的测定 | 第47-48页 |
第三章 实验结果 | 第48-75页 |
3.1 酵母对蚕豆光合作用的影响 | 第48-50页 |
3.2 酵母对蚕豆叶绿素荧光参数的影响 | 第50-51页 |
3.3 酵母对植物水分利用效率的影响 | 第51-54页 |
3.4 酵母对水稻抗旱性的影响 | 第54-62页 |
3.5 酵母诱导的气孔关闭 | 第62-63页 |
3.6 H_2O_2参与酵母诱导的气孔关闭 | 第63-65页 |
3.7 酵母诱导蚕豆叶片活性氧的爆发 | 第65-67页 |
3.8 NO、Ca~(2+)和水通道蛋白参与酵母诱导的气孔关闭 | 第67-69页 |
3.9 海藻糖可以诱导气孔关闭 | 第69-71页 |
3.10 海藻糖对光合作用的影响 | 第71-73页 |
3.11 新型奶基气孔免疫抗蒸腾剂对气孔开度和气孔导度的影响 | 第73-75页 |
第四章 讨论 | 第75-87页 |
4.1 气孔对酵母免疫响应降低蚕豆光合作用 | 第75-76页 |
4.2 气孔对酵母的免疫响应一定范围内提高了植物水分利用效率 | 第76-77页 |
4.3 气孔对酵母的免疫响应对不同生长期的水稻光合作用参数影响不同 | 第77-78页 |
4.4 气孔对酵母的免疫响应提高了水稻千粒重等产量特征 | 第78-79页 |
4.5 气孔对酵母的免疫响应提高水稻灌溉水分利用效率 | 第79-80页 |
4.6 活性氧和NO参与酵母诱导的气孔关闭 | 第80-82页 |
4.7 Ca~(2+)和水通道蛋白参与了酵母诱导的气孔关闭 | 第82页 |
4.8 海藻糖诱导气孔关闭 | 第82-83页 |
4.9 海藻糖能保护蚕豆光合器官 | 第83-84页 |
4.10 海藻糖降低蚕豆光合作用 | 第84-85页 |
4.11 新型抗蒸腾剂降低了气孔开度和气孔导度 | 第85-87页 |
第五章 结论及展望 | 第87-90页 |
5.1 结论 | 第87-88页 |
5.2 创新点 | 第88-89页 |
5.3 不足之处及展望 | 第89-90页 |
参考文献 | 第90-119页 |
附录一 个人简历 | 第119-121页 |
致谢 | 第121页 |