| 符号说明 | 第4-10页 |
| 中文摘要 | 第10-12页 |
| Abstract | 第12-13页 |
| 1 前言 | 第14-26页 |
| 1.1 真菌及其多糖概述 | 第14页 |
| 1.1.1 真菌概述 | 第14页 |
| 1.1.2 真菌多糖概述 | 第14页 |
| 1.2 锗元素概述 | 第14-17页 |
| 1.2.1 锗元素简介 | 第14-15页 |
| 1.2.2 锗元素生理功能 | 第15-17页 |
| 1.2.2.1 抗癌 | 第15页 |
| 1.2.2.2 抗衰老 | 第15页 |
| 1.2.2.3 提高人体免疫力 | 第15-16页 |
| 1.2.2.4 清除自由基 | 第16页 |
| 1.2.2.5 富集氧功能 | 第16页 |
| 1.2.2.6 降血脂功能 | 第16页 |
| 1.2.2.7 其它功能 | 第16-17页 |
| 1.3 真菌多糖的提取 | 第17-19页 |
| 1.3.1 水提醇沉法 | 第17页 |
| 1.3.2 酸提法 | 第17页 |
| 1.3.3 碱提法 | 第17-18页 |
| 1.3.4 酶提法 | 第18页 |
| 1.3.5 超声波提取法 | 第18页 |
| 1.3.6 微波提取法 | 第18-19页 |
| 1.3.7 超滤浓缩提取法 | 第19页 |
| 1.3.8 超临界CO_2萃取法 | 第19页 |
| 1.4 真菌多糖的分离与纯化 | 第19-21页 |
| 1.4.1 真菌多糖的分离 | 第19-20页 |
| 1.4.1.1 层析法 | 第19-20页 |
| 1.4.1.2 超滤法 | 第20页 |
| 1.4.2 真菌多糖的纯化 | 第20-21页 |
| 1.4.2.1 脱蛋白 | 第20页 |
| 1.4.2.2 脱色素 | 第20-21页 |
| 1.4.2.3 去除无机盐 | 第21页 |
| 1.5 真菌多糖的生物学功能 | 第21-24页 |
| 1.5.1 抗氧化活性 | 第21-22页 |
| 1.5.2 抗衰老 | 第22页 |
| 1.5.3 抗肿瘤活性 | 第22页 |
| 1.5.4 降血糖活性 | 第22页 |
| 1.5.5 降血脂活性 | 第22-23页 |
| 1.5.6 抗炎活性 | 第23页 |
| 1.5.7 抗疲劳 | 第23页 |
| 1.5.8 提高免疫力 | 第23-24页 |
| 1.6 姬松茸多糖的研究现状 | 第24-25页 |
| 1.6.1 姬松茸的生物学特性 | 第24页 |
| 1.6.2 姬松茸多糖的生物学活性 | 第24-25页 |
| 1.6.3 姬松茸多糖的结构 | 第25页 |
| 1.7 本研究的目的与意义 | 第25-26页 |
| 2 材料和方法 | 第26-39页 |
| 2.1 试验菌种 | 第26页 |
| 2.2 培养基 | 第26页 |
| 2.2.1 斜面培养基 | 第26页 |
| 2.2.2 固体培养基 | 第26页 |
| 2.2.3 液体种子培养基 | 第26页 |
| 2.2.4 富锗液体培养基 | 第26页 |
| 2.2.5 液体发酵培养基 | 第26页 |
| 2.3 试剂与试验仪器 | 第26-28页 |
| 2.3.1 主要试剂 | 第26-27页 |
| 2.3.2 主要仪器设备 | 第27页 |
| 2.3.3 层析柱及色谱柱 | 第27-28页 |
| 2.4 试验方法 | 第28-39页 |
| 2.4.1 姬松茸的培养 | 第28页 |
| 2.4.1.1 固体培养 | 第28页 |
| 2.4.1.2 液体种子培养及液体富锗培养 | 第28页 |
| 2.4.1.3 液体发酵培养条件 | 第28页 |
| 2.4.2 菌丝体的生物量测定及富集率测定 | 第28-29页 |
| 2.4.2.1 生物量的测定 | 第28页 |
| 2.4.2.2 富集率的测定：火焰原子吸收光谱法 | 第28-29页 |
| 2.4.2.3 富集率的计算 | 第29页 |
| 2.4.3 三种姬松茸多糖的提取及含量测定 | 第29-31页 |
| 2.4.3.1 EPS的提取 | 第29页 |
| 2.4.3.2 IPS和IGPS的提取 | 第29-30页 |
| 2.4.3.3 多糖的含量测定 | 第30-31页 |
| 2.4.4 三种姬松茸多糖的提取优化 | 第31-33页 |
| 2.4.4.1 EPS的PB试验 | 第31页 |
| 2.4.4.2 EPS的RSM设计 | 第31页 |
| 2.4.4.3 IPS的PB试验 | 第31-32页 |
| 2.4.4.4 IPS的RSM设计 | 第32页 |
| 2.4.4.5 IGPS的PB试验 | 第32-33页 |
| 2.4.4.6 IGPS的RSM设计 | 第33页 |
| 2.4.5 三种姬松茸多糖的分离纯化 | 第33-34页 |
| 2.4.5.1 脱蛋白：Sevag法 | 第33页 |
| 2.4.5.2 多糖组分分离 | 第33-34页 |
| 2.4.6 姬松茸多糖的体外抗氧化能力测定 | 第34-35页 |
| 2.4.6.1 清除DPPH自由基 | 第34页 |
| 2.4.6.2 对羟基自由基(·OH)清除的清除 | 第34页 |
| 2.4.6.3 还原力的测定 | 第34-35页 |
| 2.4.7 三种姬松茸多糖的体内抗衰老活性测定 | 第35-37页 |
| 2.4.7.1 动物体内抗氧化试验 | 第35页 |
| 2.4.7.2 肝脏中总抗氧化能力(T-AOC)活性测定 | 第35页 |
| 2.4.7.3 血清中谷丙转氨酶(ALT)活性测定 | 第35-36页 |
| 2.4.7.4 肝脏中MDA含量的测定 | 第36-37页 |
| 2.4.8 多糖组分的单糖组成分析 | 第37-38页 |
| 2.4.8.1 多糖组分的纯度鉴定 | 第37页 |
| 2.4.8.2 GC法测定试验原理 | 第37页 |
| 2.4.8.3 标准曲线的制作 | 第37-38页 |
| 2.4.8.4 样品的处理 | 第38页 |
| 2.4.8.5 色谱分析条件 | 第38页 |
| 2.4.9 多糖组分的红外光谱扫描分析 | 第38-39页 |
| 3 结果与分析 | 第39-68页 |
| 3.1 姬松茸富锗菌丝体的生物量及富集率 | 第39页 |
| 3.2 三种姬松茸多糖的提取优化 | 第39-52页 |
| 3.2.1 EPS提取优化 | 第39-43页 |
| 3.2.1.1 PB试验 | 第39-41页 |
| 3.2.1.2 RSM试验 | 第41-43页 |
| 3.2.2 IPS提取优化 | 第43-48页 |
| 3.2.2.1 PB试验 | 第43-45页 |
| 3.2.2.2 RSM试验 | 第45-48页 |
| 3.2.3 IGPS提取优化 | 第48-52页 |
| 3.2.3.1 IPB试验 | 第48-50页 |
| 3.2.3.2 RSM试验 | 第50-52页 |
| 3.3 三种姬松茸多糖的分离纯化 | 第52-55页 |
| 3.3.1 DEAE-纤维素分离 | 第52-53页 |
| 3.3.2 葡聚糖G-100凝胶分离 | 第53-54页 |
| 3.3.3 多糖组分的纯度鉴定 | 第54-55页 |
| 3.4 姬松茸多糖的体外抗氧化活性 | 第55-60页 |
| 3.4.1 EPS的体外抗氧化活性 | 第55-57页 |
| 3.4.1.1 EPS对DPPH的清除作用 | 第55-56页 |
| 3.4.1.2 EPS对羟基自由基的清除作用 | 第56页 |
| 3.4.1.3 EPS的还原力 | 第56-57页 |
| 3.4.2 IPS的体外抗氧化活性 | 第57-59页 |
| 3.4.2.1 IPS对DPPH的清除作用 | 第57-58页 |
| 3.4.2.2 IPS对羟基自由基的清除作用 | 第58页 |
| 3.4.2.3 IPS的还原力 | 第58-59页 |
| 3.4.3 IGPS的体外抗氧化活性 | 第59-60页 |
| 3.4.3.1 IGPS对DPPH的清除作用 | 第59页 |
| 3.4.3.2 IGPS对羟基自由基的清除作用 | 第59-60页 |
| 3.4.3.3 IGPS的还原力 | 第60页 |
| 3.5 三种姬松茸多糖的抗衰老活性 | 第60-62页 |
| 3.5.1 EPS的抗衰老活性 | 第61页 |
| 3.5.2 IPS的抗衰老活性 | 第61-62页 |
| 3.5.3 IGPS的抗衰老活性 | 第62页 |
| 3.6 气相色谱法测定姬松茸多糖的单糖组成 | 第62-66页 |
| 3.6.1 混合标样的气相色谱图及含量 | 第62-63页 |
| 3.6.2 EPS-2的单糖组成 | 第63-64页 |
| 3.6.3 IPS-2的单糖组成 | 第64-65页 |
| 3.6.4 IGPS-3-1的单糖组成 | 第65-66页 |
| 3.7 红外光谱扫描测定三种姬松茸多糖的结构 | 第66-68页 |
| 3.7.1 EPS-2的结构测定 | 第66页 |
| 3.7.2 IPS-2的结构测定 | 第66-67页 |
| 3.7.3 IGPS-3-1的结构测定 | 第67-68页 |
| 4 讨论 | 第68-70页 |
| 5 结论 | 第70-72页 |
| 参考文献 | 第72-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第77页 |