| 缩略语表 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-12页 |
| Abstract | 第12-17页 |
| 前言 | 第18-20页 |
| 文献回顾 | 第20-34页 |
| 1 雌激素与 ER | 第20-24页 |
| 2 雌激素的神经保护作用及机制 | 第24-28页 |
| 3 对雌激素神经保护作用的质疑 | 第28-30页 |
| 4 雌激素神经保护作用的反思 | 第30-32页 |
| 5 小结 | 第32-34页 |
| 实验一 不同生理周期卵巢雌激素的神经保护作用研究 | 第34-50页 |
| 1 材料 | 第34-37页 |
| 1.1 实验动物 | 第34-35页 |
| 1.2 主要试剂 | 第35页 |
| 1.3 手术器械 | 第35页 |
| 1.4 主要仪器和材料 | 第35-37页 |
| 2 方法 | 第37-45页 |
| 2.1 实验设计与动物分组 | 第37-38页 |
| 2.2 OVX | 第38页 |
| 2.3 生理周期判定 | 第38页 |
| 2.4 大鼠侧脑室注射 | 第38-39页 |
| 2.5 大鼠 MCAO 模型制作 | 第39页 |
| 2.6 大鼠神经功能学评分 | 第39-40页 |
| 2.7 循环 E2 测定 | 第40页 |
| 2.8 TTC 染色计算脑梗死容积 | 第40-41页 |
| 2.9 尼氏染色 | 第41页 |
| 2.10 免疫印迹法（Western-blot） | 第41-45页 |
| 2.11 统计学分析 | 第45页 |
| 3 结果 | 第45-49页 |
| 3.1 生理周期四期、OVX 组和 Letro 组阴道涂片结果 | 第45-46页 |
| 3.2 循环 E2 检测显示 PE 血清 E2 水平最高，OVX 后最低 | 第46页 |
| 3.3 高血清水平 E2 通过 ERα改善脑缺血损伤的预后 | 第46-49页 |
| 4 讨论 | 第49-50页 |
| 实验二 海马雌激素的神经保护作用研究 | 第50-68页 |
| 1 材料 | 第51-52页 |
| 1.1 实验动物 | 第51页 |
| 1.2 主要试剂 | 第51页 |
| 1.3 手术器械 | 第51页 |
| 1.4 主要仪器和材料 | 第51-52页 |
| 2 方法 | 第52-59页 |
| 2.1 实验设计与动物分组 | 第52-53页 |
| 2.2 OVX | 第53页 |
| 2.3 E2 替代 | 第53页 |
| 2.4 水迷宫（Morris Water-Maze，MWM）实验 | 第53-54页 |
| 2.5 恐惧箱（Fear conditioning）实验 | 第54页 |
| 2.6 GCI 模型制备 | 第54-55页 |
| 2.7 神经功能学评分 | 第55页 |
| 2.8 TUNEL 染色 | 第55-56页 |
| 2.9 NeuN 染色 | 第56-57页 |
| 2.10 海马 E2 提取 | 第57页 |
| 2.11 循环、海马 E2 测定 | 第57页 |
| 2.12 免疫印迹法（Western-blot） | 第57-58页 |
| 2.13 Real-time PCR | 第58-59页 |
| 2.14 统计学分析 | 第59页 |
| 3 结果 | 第59-67页 |
| 3.1 行为学实验结果显示 OVX1w 后 E2 替代对海马的学习记忆功能有改善作用，而这种作用在 LTED 动物消失 | 第59-61页 |
| 3.2 海马 ERα和芳香化酶在海马 E2 的神经保护中起关键作用 | 第61-63页 |
| 3.3 循环和海马 E2 水平检测结果 | 第63-64页 |
| 3.4 GCI 后 24h 小鼠神经功能学评分 | 第64-65页 |
| 3.5 OVX1w 后 E2 替代可明显提高神经元存活，减少凋亡，而 LTED 后 E2 替代其保护作用消失 | 第65-67页 |
| 4 讨论 | 第67-68页 |
| 小结 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-79页 |
| 个人简历和研究成果 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80页 |
