| 缩略语表 | 第5-7页 |
| 中文摘要 | 第7-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 前言 | 第13-15页 |
| 文献回顾 | 第15-23页 |
| 第一部分 人牙周膜干细胞的分离、培养、鉴定及组织特异性 ECM 的制备 | 第23-33页 |
| 1 材料 | 第23-24页 |
| 1.1 实验试剂 | 第23-24页 |
| 1.2 实验设备 | 第24页 |
| 2 方法 | 第24-27页 |
| 2.1 hBMCs 的原代培养 | 第24页 |
| 2.2 hPDLCs 的原代培养 | 第24-25页 |
| 2.3 hPDLSCs 的分离、培养与鉴定 | 第25-26页 |
| 2.4 分别制备 hBMCs 与 hPDLCs 组织特异性细胞外基质（ECM） | 第26-27页 |
| 3 结果 | 第27-30页 |
| 3.1 hPDLCs 原代培养 | 第27页 |
| 3.2 流式细胞仪对 hPDLSCs 的细胞表型鉴定 | 第27-28页 |
| 3.3 hPDLSCs 的克隆形成 | 第28页 |
| 3.4 hPDLSCs 的成骨和成脂分化能力 | 第28-29页 |
| 3.5 ECM 形态学观察结果 | 第29-30页 |
| 4 讨论 | 第30-33页 |
| 第二部分 组织特异性 ECM 对体外培养 hPDLSCS 干细胞特性的维持作用 | 第33-46页 |
| 1 材料 | 第33-34页 |
| 1.1 实验试剂 | 第33-34页 |
| 1.2 实验设备 | 第34页 |
| 2 方法 | 第34-36页 |
| 2.1 组织特异性 ECM 对于人牙周膜干细胞克隆形成的影响 | 第34页 |
| 2.2 组织特异性 ECM 对人牙周膜干细胞成骨分化的影响 | 第34-35页 |
| 2.3 组织特异性 ECM 对人牙周膜干细胞成脂分化的影响 | 第35页 |
| 2.4 Real-time PCR 检测人牙周膜干细胞成骨、成脂相关基因的表达 | 第35-36页 |
| 2.5 统计学方法 | 第36页 |
| 3 结果 | 第36-43页 |
| 3.1 两种组织特异性 ECM 对 hPDLSCs 克隆形成的影响 | 第36-39页 |
| 3.2 两种组织特异性 ECM 对于 hPDLSCs 成骨分化的影响 | 第39-42页 |
| 3.3 两种组织特异性 ECM 对于 hPDLSCs 成脂分化的影响 | 第42-43页 |
| 4 讨论 | 第43-46页 |
| 第三部分 组织特异性 ECM 复合 hPDLSCS 在裸鼠体内的生长与分化研究 | 第46-55页 |
| 1 材料 | 第46-47页 |
| 1.1 主要试剂 | 第46页 |
| 1.2 主要仪器 | 第46-47页 |
| 1.3 生物支架 | 第47页 |
| 1.4 动物 | 第47页 |
| 2 方法 | 第47-48页 |
| 2.1 制备 ECM | 第47页 |
| 2.2 实验分组 | 第47页 |
| 2.3 牙周膜干细胞移植复合物的制备 | 第47页 |
| 2.4 裸鼠体内移植 | 第47-48页 |
| 2.5 取材并制备标本与染色 | 第48页 |
| 3 结果 | 第48-52页 |
| 3.1 hPDLCs-ECM 培养的 hPDLSCs 在裸鼠体内的生长与分化 | 第48-50页 |
| 3.2 hBMCs-ECM 培养的 hPDLSCs 在裸鼠体内的生长与分化 | 第50-52页 |
| 4 讨论 | 第52-55页 |
| 小结 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-64页 |
| 个人简历和研究成果 | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65-67页 |
| 临床病例报告 | 第67-82页 |
