| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第一章 前言 | 第12-21页 |
| 1.1 生物固氮的研究概况 | 第12-15页 |
| 1.1.1 生物固氮 | 第12页 |
| 1.1.2 生物固氮的主要三种形式 | 第12页 |
| 1.1.3 生物固氮的重要作用 | 第12-13页 |
| 1.1.4 生物固氮在农业中的应用 | 第13-15页 |
| 1.2 根瘤菌的研究 | 第15-19页 |
| 1.2.1 根瘤菌 | 第15-16页 |
| 1.2.1.1 根瘤菌的生物学特性 | 第15-16页 |
| 1.2.1.2 根瘤菌的分类 | 第16页 |
| 1.2.2 根瘤的形成 | 第16-18页 |
| 1.2.3 根瘤菌与宿主植物的共生互利 | 第18页 |
| 1.2.4 根瘤菌与豆科植物的共生固氮在生物固氮中的重要位置 | 第18-19页 |
| 1.3 根瘤菌的系统发育研究方法 | 第19-20页 |
| 1.3.1 16S rDNA基因序列分析 | 第19-20页 |
| 1.3.2 23S rRNA基因序列分析 | 第20页 |
| 1.3.3 其它染色体基因 | 第20页 |
| 1.4 本研究的意义 | 第20-21页 |
| 第二章 大豆根瘤菌的分离纯化 | 第21-32页 |
| 2.1 实验材料 | 第21-22页 |
| 2.1.1 实验样品采集 | 第21页 |
| 2.1.2 实验仪器、培养基、试剂 | 第21-22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-26页 |
| 2.2.1 YMA培养基优化 | 第22页 |
| 2.2.2 根瘤菌的分离 | 第22-23页 |
| 2.2.2.1 根瘤菌的初步分离 | 第22-23页 |
| 2.2.2.2 根瘤菌的保存验证 | 第23页 |
| 2.2.3 细菌学鉴定 | 第23-24页 |
| 2.2.4 根瘤菌的纯化鉴定 | 第24-26页 |
| 2.2.4.1 液体培养根瘤菌 | 第24页 |
| 2.2.4.2 DNA提取 | 第24-25页 |
| 2.2.4.3 PCR反应程序优化 | 第25页 |
| 2.2.4.4 琼脂糖凝胶回收测序分析 | 第25-26页 |
| 2.3 结果与分析 | 第26-32页 |
| 2.3.1 YMA培养基优化 | 第26-27页 |
| 2.3.2 根瘤菌的分离 | 第27-28页 |
| 2.3.2.1 根瘤菌的保存验证 | 第28页 |
| 2.3.3 细菌学鉴定 | 第28-29页 |
| 2.3.4 DNA提取 | 第29页 |
| 2.3.5 PCR反应程序优化 | 第29-30页 |
| 2.3.6 琼脂糖凝胶回收测序分析 | 第30-32页 |
| 第三章 长白山区大豆根瘤菌的遗传多样性 | 第32-37页 |
| 3.1 实验材料 | 第32页 |
| 3.1.1 材料 | 第32页 |
| 3.1.2 主要实验仪器与试剂 | 第32页 |
| 3.2 试验方法 | 第32-33页 |
| 3.2.1 DNA提取 | 第32页 |
| 3.2.2 PCR扩增 | 第32-33页 |
| 3.3 结果与分析 | 第33-37页 |
| 3.3.1 固氮基因nif基因的测序结果与分析 | 第33-35页 |
| 3.3.2 管家基因recA基因的测序结果分析 | 第35-37页 |
| 第四章 讨论与结论 | 第37-39页 |
| 4.1 讨论 | 第37页 |
| 4.2 结论 | 第37-39页 |
| 参考文献 | 第39-47页 |
| 致谢 | 第47页 |