| 中英文缩略词对照表 | 第5-9页 |
| 摘要 | 第9-11页 |
| ABSTRACT | 第11-12页 |
| 前言 | 第13-14页 |
| 研究内容与方法 | 第14-42页 |
| 第一部分 体外筛选调控巨噬细胞极化的miRNA分子 | 第14-22页 |
| 1.1 主要仪器和试剂 | 第14-15页 |
| 1.1.1 细胞株 | 第14页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第14页 |
| 1.1.3 实验仪器 | 第14-15页 |
| 1.2 实验方法 | 第15-17页 |
| 1.2.1 分离骨髓来源巨噬细胞 | 第15页 |
| 1.2.2 ELISA检测细胞因子分泌 | 第15页 |
| 1.2.3 流式细胞术检测 | 第15页 |
| 1.2.4 miRNA芯片检测和分析 | 第15-16页 |
| 1.2.5 qRT-PCR验证差异表达的miRNA | 第16-17页 |
| 1.3 研究结果 | 第17-22页 |
| 1.3.1 体外极化的M1和M2型巨噬细胞的鉴定 | 第17-18页 |
| 1.3.2 miRNA芯片结果分析 | 第18-21页 |
| 1.3.3 qRT-PCR验证基因芯片结果 | 第21-22页 |
| 第二部分 miR-125b-5p在巨噬细胞极化中的作用研究 | 第22-34页 |
| 2.1 主要仪器和试剂 | 第22-24页 |
| 2.1.1 实验动物、细胞株 | 第22页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第22-24页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-26页 |
| 2.2.1 细胞培养以及巨噬细胞的体外刺激 | 第24页 |
| 2.2.2 qRT-PCR检测巨噬细胞极化相关基因的表达 | 第24-26页 |
| 2.2.3 inhibitor及mimics转染 | 第26页 |
| 2.3 研究结果 | 第26-34页 |
| 2.3.1 miR-125b-5p主要高表达于M | 第26-27页 |
| 2.3.2 过表达miR-125b-5p抑制M1的表型,促进M2的表型 | 第27-30页 |
| 2.3.3 过表达miR-125b-5p促进M1转化为M2,同时升高M2的表型 | 第30-31页 |
| 2.3.4 抑制miR-125b-5p促进M2向M1转化,同时降低M2的表型… | 第31-34页 |
| 第三部分 miR-125b-5p调控巨噬细胞极化的作用机制研究 | 第34-42页 |
| 3.1 主要仪器和试剂 | 第34-35页 |
| 3.1.1 实验动物、细胞株 | 第34页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第34页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第34-35页 |
| 3.2 实验方法 | 第35-38页 |
| 3.2.1 细胞培养 | 第35页 |
| 3.2.2 双荧光素酶报告基因分析 | 第35-36页 |
| 3.2.3 蛋白质免疫印迹分析 | 第36-38页 |
| 3.3 研究结果 | 第38-42页 |
| 3.3.1 miR-125b-5p通过TRAF6负向调控炎症反应 | 第38-40页 |
| 3.3.2 抑制miR-125b-5p促进NF-κB信号通路活化 | 第40-41页 |
| 3.3.3 过表达miR-125b-5p促进STAT6信号通路活化 | 第41-42页 |
| 统计学方法 | 第42-43页 |
| 技术路线图 | 第43-44页 |
| 讨论 | 第44-46页 |
| 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-52页 |
| 综述 | 第52-65页 |
| 参考文献 | 第59-65页 |
| 作者简介及读研期间主要科研成果 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
