| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第13-33页 |
| 1.1 引言 | 第13-14页 |
| 1.2 分子影像技术 | 第14-19页 |
| 1.2.1 分子影像技术的发展历程 | 第15页 |
| 1.2.2 分子影像技术的优势与特点 | 第15-16页 |
| 1.2.3 分子影像技术的分类 | 第16-17页 |
| 1.2.4 光学成像 | 第17-19页 |
| 1.3 生物法合成纳米材料 | 第19-28页 |
| 1.3.1 生物法合成纳米材料的发展历程 | 第19-21页 |
| 1.3.2 生物法合成纳米材料的分类 | 第21-23页 |
| 1.3.3 生物法合成纳米材料的机制 | 第23-27页 |
| 1.3.4 生物法合成纳米材料的优缺点 | 第27-28页 |
| 1.4 基因组学和蛋白质组学 | 第28-30页 |
| 1.5 本论文选题思路和主要工作 | 第30-33页 |
| 第二章 原位生物合成铕纳米复合物在肿瘤成像中的应用 | 第33-51页 |
| 2.1 引言 | 第33-35页 |
| 2.2 实验方法 | 第35-40页 |
| 2.2.1 主要仪器和试剂 | 第35-36页 |
| 2.2.2 细胞的培养 | 第36页 |
| 2.2.3 原位生物合成铕复合物的细胞毒性检测 | 第36-37页 |
| 2.2.4 原位生物合成铕复合物的制备及提取 | 第37页 |
| 2.2.5 铕纳米复合物的表征 | 第37页 |
| 2.2.6 荧光共聚焦显微成像的研究 | 第37-38页 |
| 2.2.7 实验鼠的购买与饲养 | 第38页 |
| 2.2.8 构建皮下移植瘤裸鼠模型 | 第38页 |
| 2.2.9 裸鼠活体成像 | 第38-39页 |
| 2.2.10 ICP-MS检测荷瘤裸鼠体内铕元素的生物分布 | 第39页 |
| 2.2.11 组织器官的病理切片分析 | 第39页 |
| 2.2.12 裸鼠肝肾功能分析 | 第39-40页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第40-50页 |
| 2.3.1 铕离子溶液及原位生物合成铕纳米复合物的细胞毒性检测 | 第40页 |
| 2.3.2 细胞内原位生物合成铕纳米复合物的表征 | 第40-42页 |
| 2.3.3 细胞荧光成像的研究 | 第42-44页 |
| 2.3.4 裸鼠活体的荧光成像研究 | 第44-47页 |
| 2.3.5 荷瘤裸鼠体内铕元素的生物分布 | 第47-48页 |
| 2.3.6 裸鼠活体的组织病理切片及研究 | 第48-50页 |
| 2.4 结论 | 第50-51页 |
| 第三章 全基因组学分析原位生物合成荧光铕纳米复合物的分子机制 | 第51-73页 |
| 3.1 引言 | 第51-52页 |
| 3.2 实验方法 | 第52-58页 |
| 3.2.1 主要仪器和试剂 | 第52-53页 |
| 3.2.2 细胞的培养和MTT实验 | 第53页 |
| 3.2.3 细胞的共聚焦荧光成像 | 第53页 |
| 3.2.4 HeLa细胞总RNA提取 | 第53页 |
| 3.2.5 总RNA质量检测 | 第53页 |
| 3.2.6 总RNA的纯化 | 第53-54页 |
| 3.2.7 制备标记反应 | 第54-55页 |
| 3.2.8 纯化标记/扩增的RNA和标记的cRNA | 第55页 |
| 3.2.9 杂交实验 | 第55-56页 |
| 3.2.10 微阵列洗涤 | 第56页 |
| 3.2.11 微阵列扫描 | 第56-57页 |
| 3.2.12 Agilent Feature Extraction 软件读取陈列数据 | 第57页 |
| 3.2.13 基因表达数据的GO分析和路径分析 | 第57页 |
| 3.2.14 qRT-PCR 实验分析 | 第57-58页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第58-72页 |
| 3.3.1 细胞毒性测定 | 第58-59页 |
| 3.3.2 共聚焦荧光成像 | 第59页 |
| 3.3.3 RNA定量和基因表达谱 | 第59-64页 |
| 3.3.4 实时荧光定量PCR(qRT-PCR)分析 | 第64-65页 |
| 3.3.5 差异表达基因的GO功能分析 | 第65-68页 |
| 3.3.6 生物路径分析 | 第68-69页 |
| 3.3.7 讨论 | 第69-72页 |
| 3.4 结论 | 第72-73页 |
| 第四章 利用等重同位素多标签相对定量蛋白质组学（iTRAQ）研究原位生物合成荧光铕纳米复合物的分子机制 | 第73-91页 |
| 4.1 引言 | 第73-74页 |
| 4.2 实验方法 | 第74-78页 |
| 4.2.1 主要仪器和试剂 | 第74-75页 |
| 4.2.2 细胞培养 | 第75页 |
| 4.2.3 样品制备 | 第75页 |
| 4.2.4 SDS-聚丙烯酰胺凝胶(SDS-PAGE)电泳 | 第75页 |
| 4.2.5 酶解和肤段定量 | 第75-76页 |
| 4.2.6 MALDI TOF质谱和ESI质谱鉴定 | 第76页 |
| 4.2.7 肽段标记 | 第76页 |
| 4.2.8 SCX 分级 | 第76-77页 |
| 4.2.9 毛细管高效液相色谱 | 第77页 |
| 4.2.10 质谱鉴定 | 第77页 |
| 4.2.11 数据分析 | 第77-78页 |
| 4.3 结果和讨论 | 第78-90页 |
| 4.3.1 蛋白质量检测 | 第78-79页 |
| 4.3.2 蛋白质BCA法测定结果 | 第79页 |
| 4.3.3 酶解肽段浓度测定 | 第79页 |
| 4.3.4 MALDI-TOF质谱及ESI质谱鉴定 | 第79-80页 |
| 4.3.5 肽段SCX分级 | 第80-81页 |
| 4.3.6 蛋白质鉴定结果 | 第81页 |
| 4.3.7 定量分析及统计 | 第81-82页 |
| 4.3.8 差异表达基因的GO功能分析 | 第82-85页 |
| 4.3.9 差异表达蛋白的生物路径分析(KEGG分析) | 第85-90页 |
| 4.4 结论 | 第90-91页 |
| 第五章 生物合成铜纳米簇用于细胞内纳米温度计 | 第91-106页 |
| 5.1 引言 | 第91-92页 |
| 5.2 实验部分 | 第92-95页 |
| 5.2.1 主要仪器与试剂 | 第92-93页 |
| 5.2.2 细胞培养和细胞毒性检测 | 第93页 |
| 5.2.3 铜纳米簇的合成和表征 | 第93-94页 |
| 5.2.4 铜纳米簇荧光量子产率(Quantum Yield,QY)的计算 | 第94页 |
| 5.2.5 细胞的共聚焦荧光成像研究 | 第94页 |
| 5.2.6 生物合成铜纳米簇的提取和保存 | 第94页 |
| 5.2.7 纳米温度计相对灵敏度的计算 | 第94-95页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第95-105页 |
| 5.3.1 前驱体溶液的制备 | 第95页 |
| 5.3.2 铜纳米簇的合成及表征 | 第95-99页 |
| 5.3.3 原位生物合成铜纳米簇的细胞毒性研究 | 第99-100页 |
| 5.3.4 原位生物合成铜纳米簇的共聚焦荧光成像研究 | 第100-101页 |
| 5.3.5 铜纳米簇在体外的温敏特性研究 | 第101-103页 |
| 5.3.6 铜纳米簇在细胞内的温敏特性研究 | 第103-105页 |
| 5.4 结论 | 第105-106页 |
| 第六章 总结与展望 | 第106-108页 |
| 6.1 本论文的主要工作 | 第106-107页 |
| 6.2 展望 | 第107-108页 |
| 参考文献 | 第108-125页 |
| 在校期间发表论文情况 | 第125-128页 |
| 致谢 | 第128-129页 |
