| 前言 | 第4-5页 |
| 中文摘要 | 第5-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 第一章 绪论 | 第15-24页 |
| 1.1 自噬 | 第15-19页 |
| 1.1.1 自噬的形成 | 第15-17页 |
| 1.1.2 自噬的促存活机制 | 第17页 |
| 1.1.3 自噬与细胞死亡 | 第17页 |
| 1.1.4 自噬与肿瘤 | 第17-18页 |
| 1.1.5 自噬相关信号通路 | 第18-19页 |
| 1.2 甲状腺滤泡癌中的 PI3K-AKT-mTOR 信号通路 | 第19-23页 |
| 1.2.1 PI3K-AKT-mTOR 信号通路分子机制 | 第19-20页 |
| 1.2.2 PI3K-AKT-mTOR 信号通路的靶向治疗 | 第20-21页 |
| 1.2.3 PI3K-AKT-mTOR 信号通路的靶向治疗在甲状腺滤泡癌中放化疗的应用 | 第21-23页 |
| 1.3 立题依据与展望 | 第23-24页 |
| 第二章 材料与方法 | 第24-35页 |
| 2.1 主要试剂及器材 | 第24-25页 |
| 2.1.1 试剂 | 第24-25页 |
| 2.1.2 器材 | 第25页 |
| 2.2 主要仪器 | 第25-26页 |
| 2.3 细胞培养技术 | 第26页 |
| 2.4 细胞培养试剂配制 | 第26-27页 |
| 2.4.1 胰酶的配制 | 第26页 |
| 2.4.2 D-Hanks 液配制 | 第26-27页 |
| 2.4.3 DMEM 培养液 | 第27页 |
| 2.5 细胞的冻存与复苏 | 第27页 |
| 2.6 PI3KCA 沉默细胞模型的建立 | 第27-28页 |
| 2.7 蛋白制免疫印迹法（Western blot） | 第28-33页 |
| 2.7.1 主要试剂的配制 | 第28-32页 |
| 2.7.2 SDS-PAGE 聚丙烯酰胺凝胶的制备 | 第32页 |
| 2.7.3 细胞总蛋白的提取 | 第32页 |
| 2.7.4 蛋白浓度的测定 | 第32页 |
| 2.7.5 主要方法步骤 | 第32-33页 |
| 2.8 放化疗条件 | 第33页 |
| 2.8.1 照射条件 | 第33页 |
| 2.8.2 化疗条件 | 第33页 |
| 2.9 细胞增殖检测 | 第33页 |
| 2.10 单丹磺酰尸胺（MDC）荧光染色法检测自噬 | 第33-34页 |
| 2.11 统计学分析方法 | 第34-35页 |
| 第三章 实验结果 | 第35-41页 |
| 3.1 构建 FTC133 PI3KCA 沉默模型 | 第35页 |
| 3.2 PI3KCA 及 LY294002 在 FTC133 细胞中的作用机制 | 第35-36页 |
| 3.3 放疗对 FTC133 细胞的杀伤作用 | 第36-37页 |
| 3.4 化疗对 FTC133 细胞的杀伤作用 | 第37页 |
| 3.5 FTC133 细胞对 LY294002 的药物敏感性 | 第37-38页 |
| 3.6 PI3KCA 对 FTC 放化疗杀伤作用的影响 | 第38-39页 |
| 3.7 自噬在 FTC 放化疗增敏中的作用 | 第39-41页 |
| 第四章 讨论 | 第41-44页 |
| 4.1 放化疗对 FTC133 细胞的杀伤作用 | 第41-42页 |
| 4.2 PI3KCA 在甲状腺滤泡癌中的作用途径 | 第42-43页 |
| 4.3 PI3KCA 对 FTC133 放化疗增敏作用的影响 | 第43-44页 |
| 结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-53页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文及科研成果 | 第53-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
