| 摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8页 |
| 第一章 绪论 | 第9-40页 |
| 1.1 引言 | 第9-10页 |
| 1.2 单壁碳纳米管简介 | 第10-20页 |
| 1.2.1 单壁碳纳米管的电子结构 | 第10-11页 |
| 1.2.2 单壁碳纳米管的金属或半导体性质判断 | 第11-12页 |
| 1.2.3 单壁碳纳米管的制备 | 第12-14页 |
| 1.2.4 单壁碳纳米管的性质 | 第14-15页 |
| 1.2.4.1 单壁碳纳米管的力学性质 | 第14页 |
| 1.2.4.2 单壁碳纳米管的电学性质 | 第14-15页 |
| 1.2.4.3 单壁碳纳米管的热学性质 | 第15页 |
| 1.2.4.4 单壁碳纳米管的其他性质 | 第15页 |
| 1.2.5 单壁碳纳米管的功能化修饰 | 第15-20页 |
| 1.2.5.1 共价功能化 | 第16-17页 |
| 1.2.5.2 非共价功能化 | 第17-20页 |
| 1.3 单壁碳纳米管的近红外荧光特性 | 第20-26页 |
| 1.3.1 不同(n,m)单壁碳纳米管的近红外光谱峰位置 | 第20-22页 |
| 1.3.2 单壁碳纳米管的近红外光谱测定仪器 | 第22页 |
| 1.3.3 单壁碳纳米管的近红外荧光应用 | 第22-26页 |
| 1.4 单壁碳纳米管的淬灭特性 | 第26-29页 |
| 1.4.1 单壁碳纳米管的淬灭机理 | 第26-27页 |
| 1.4.2 单壁碳纳米管淬灭特性的应用：淬灭荧光标记DNA的荧光 | 第27-29页 |
| 1.5 论文设计思路及创新性 | 第29-31页 |
| 参考文献 | 第31-40页 |
| 第二章 微流控芯片中基于单壁碳纳米管近红外荧光的汞离子检测方法研究 | 第40-59页 |
| 2.1 引言 | 第40-42页 |
| 2.1.1 单壁碳纳米管的近红外荧光应用前景 | 第40页 |
| 2.1.2 微流控系统的研究进展概述 | 第40-41页 |
| 2.1.3 水中汞离子检测的研究进展 | 第41页 |
| 2.1.4 本工作研究思路和意义 | 第41-42页 |
| 2.2 实验部分 | 第42-45页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第42-43页 |
| 2.2.1.1 实验仪器 | 第42页 |
| 2.2.1.2 实验试剂 | 第42页 |
| 2.2.1.3 表征仪器 | 第42-43页 |
| 2.2.2 微流控芯片的制作 | 第43-44页 |
| 2.2.3 芯片上的近红外检测仪器概况 | 第44页 |
| 2.2.4 实验步骤 | 第44-45页 |
| 2.2.4.1 d16/SWNTs溶液的制备 | 第44-45页 |
| 2.2.4.2 微流控系统的进样 | 第45页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第45-56页 |
| 2.3.1 基于SWNTs的分散-聚集状态改变的汞离子检测原理 | 第45-46页 |
| 2.3.2 d16/SWNTs溶液与Hg~(2+)之间反应的表征 | 第46-49页 |
| 2.3.2.1 圆二色谱表征 | 第46-48页 |
| 2.3.2.2 紫外-可见光光谱表征 | 第48页 |
| 2.3.2.3 原子力显微镜图像表征 | 第48-49页 |
| 2.3.3 汞离子导致的SWNTs NIR发射光谱值的下降 | 第49-51页 |
| 2.3.4 常规体系与微流控体系中Hg~(2+)检测效果的比较 | 第51-54页 |
| 2.3.4.1 常规体系与微流控体系中反应所需样品量比较 | 第51页 |
| 2.3.4.2 常规体系与微流控体系中达到平台的反应时间比较 | 第51-52页 |
| 2.3.4.3 常规体系与微流控体系中检测灵敏度的比较 | 第52-54页 |
| 2.3.5 常规体系与微流控体系中的检测选择性测试 | 第54-55页 |
| 2.3.6 应用：环境水样的微流控系统汞离子检测 | 第55-56页 |
| 2.4 本章小结 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-59页 |
| 第三章 基于单壁碳纳米管和核酸外切酶Ⅲ的信号放大新方法用于核酸检测的研究 | 第59-74页 |
| 3.1 引言 | 第59-60页 |
| 3.1.1 酶切信号放大的核酸检测研究进展 | 第59页 |
| 3.1.2 单壁碳纳米管在核酸检测中的应用前景 | 第59页 |
| 3.1.3 核酸外切酶Ⅲ简介 | 第59-60页 |
| 3.1.4 本工作研究意义 | 第60页 |
| 3.2 实验部分 | 第60-63页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第60-61页 |
| 3.2.1.1 实验仪器 | 第60页 |
| 3.2.1.2 实验试剂 | 第60页 |
| 3.2.1.3 单链DNA名称及相应序列 | 第60-61页 |
| 3.2.2 实验步骤 | 第61-62页 |
| 3.2.3 测试与表征 | 第62-63页 |
| 3.2.3.1 聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)表征荧光信号放大过程 | 第62页 |
| 3.2.3.2 荧光分光光度计测试DNA溶液发射光谱情况 | 第62-63页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第63-71页 |
| 3.3.1 基于单壁碳纳米管淬灭功能的Exo Ⅲ辅助信号放大核酸检测原理 | 第63页 |
| 3.3.2 SWNT对FAM标记的DNA荧光淬灭效果考察 | 第63-65页 |
| 3.3.2.1 SWNT对不同浓度探针ssDNA荧光淬灭效果 | 第63-64页 |
| 3.3.2.2 不同浓度SWNT对不同DNA中标记的FAM荧光淬灭效率. | 第64-65页 |
| 3.3.3 不同反应条件对体系荧光增强效果的影响 | 第65-67页 |
| 3.3.3.1 NaCl浓度对体系荧光强度的影响 | 第65-66页 |
| 3.3.3.2 温度对体系荧光强度的影响 | 第66-67页 |
| 3.3.4 Exo Ⅲ辅助荧光信号放大过程考察 | 第67-69页 |
| 3.3.4.1 Exo Ⅲ辅助荧光信号放大过程的SDS-PAGE表征 | 第67-68页 |
| 3.3.4.2 Exo Ⅲ辅助荧光信号放大过程荧光强度变化 | 第68-69页 |
| 3.3.5 Exo Ⅲ辅助荧光信号放大过程选择性的考察 | 第69-70页 |
| 3.3.6 应用：人体免疫缺损病毒H1V1浓度测试 | 第70-71页 |
| 3.4 本章小结 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-74页 |
| 第四章 论文总结以及下一步工作建议 | 第74-75页 |
| 4.1 论文总结 | 第74页 |
| 4.2 下一步工作建议 | 第74-75页 |
| 硕士期间科研成果情况 | 第75-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
