| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 第1章 前言 | 第11-13页 |
| 第2章 材料和方法 | 第13-23页 |
| 2.1 实验动物的选择 | 第13页 |
| 2.2 实验主要材料和仪器设备 | 第13-15页 |
| 2.2.1 实验主要仪器设备 | 第13-14页 |
| 2.2.2 实验主要试剂 | 第14页 |
| 2.2.3 实验药物 | 第14页 |
| 2.2.4 实验主要试剂配制方法 | 第14-15页 |
| 2.3 动物瘢痕模型建立 | 第15页 |
| 2.4 瘢痕增生组织块分组及给药方法 | 第15页 |
| 2.5 创面及瘢痕增生情况观察 | 第15页 |
| 2.6 组织病理学观察 | 第15-18页 |
| 2.6.1 组织标本制作 | 第15-16页 |
| 2.6.2 HE 染色 | 第16页 |
| 2.6.3 Masson 染色 | 第16-17页 |
| 2.6.4 免疫组织化学（SP 法）检测 Ⅰ、Ⅲ 型胶原表达 | 第17-18页 |
| 2.6.5 免疫组织化学（SABC 法）检测 TGF-β1 表达 | 第18页 |
| 2.7 RT-PCR 检测 mRNA 表达 | 第18-21页 |
| 2.7.1 组织总 RNA 提取 | 第18-19页 |
| 2.7.2 cDNA 的逆转录合成 | 第19-20页 |
| 2.7.3 PCR 扩增 | 第20-21页 |
| 2.7.4 扩增产物琼脂糖凝胶电泳 | 第21页 |
| 2.8 图片处理及分析方法 | 第21-22页 |
| 2.9 统计学处理 | 第22-23页 |
| 第3章 结果 | 第23-28页 |
| 3.1 兔耳创面及瘢痕增生组织形态学变化 | 第23页 |
| 3.2 各组瘢痕组织学变化 | 第23-24页 |
| 3.2.1 HE 染色观察 | 第23页 |
| 3.2.2 Masson 染色观察 | 第23-24页 |
| 3.3 各组瘢痕免疫组织化学结果 | 第24-25页 |
| 3.3.1 Ⅰ、Ⅲ 型胶原免疫组织化学结果 | 第24页 |
| 3.3.2 TGF-β1 免疫组织化学结果 | 第24-25页 |
| 3.4 RT-PCR 检测 mRNA 表达情况 | 第25-28页 |
| 3.4.1 各组瘢痕组织总 RNA 纯度及浓度 | 第25页 |
| 3.4.2 各组 Ⅰ、Ⅲ 型胶原 mRNA 表达情况 | 第25-26页 |
| 3.4.3 各组 TGF-β1 及 Smad3mRNA 表达情况 | 第26-28页 |
| 第4章 讨论 | 第28-36页 |
| 4.1 研究背景 | 第28-29页 |
| 4.2 动物模型的选择与制作 | 第29-30页 |
| 4.3 激素对增生性瘢痕的治疗作用 | 第30-31页 |
| 4.4 Ⅰ、Ⅲ 型胶原与增生性瘢痕关系及其变化意义 | 第31-32页 |
| 4.5 TGF-β1 及信号通路 Smads 与增生性瘢痕的关系及其变化意义 | 第32-34页 |
| 4.6 粉防己碱抑制增生性瘢痕的机制探讨 | 第34-36页 |
| 第5章 结论与展望 | 第36-37页 |
| 致谢 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-41页 |
| 附图 | 第41-48页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第48-49页 |
| 综述 | 第49-56页 |
| 参考文献 | 第55-56页 |
