| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 目录 | 第8-10页 |
| 缩略词表 | 第10-11页 |
| 第一章 前言 | 第11-13页 |
| 第二章 材料与方法 | 第13-22页 |
| 2.1 主要试剂与药品 | 第13-14页 |
| 2.2 主要仪器 | 第14页 |
| 2.3 溶液配制 | 第14-15页 |
| 2.4 实验方法 | 第15-21页 |
| 2.4.1 实验动物及分组 | 第15页 |
| 2.4.2 大鼠SE模型的建立 | 第15-16页 |
| 2.4.3 灌注取材 | 第16页 |
| 2.4.4 冰冻切片及贴片 | 第16页 |
| 2.4.5 新鲜海马组织的取材 | 第16页 |
| 2.4.6 免疫组织化学(SP法) | 第16-17页 |
| 2.4.7 免疫荧光双标 | 第17-18页 |
| 2.4.8 Real-Time qPCR检测 | 第18-21页 |
| 2.5 统计学处理 | 第21-22页 |
| 第三章 结果 | 第22-33页 |
| 3.1 氯化锂-匹罗卡品大鼠SE模型的造模情况 | 第22页 |
| 3.1.1 行为学观察 | 第22页 |
| 3.1.2 造模数据统计 | 第22页 |
| 3.2 YKL-40免疫组化及mRNA表达 | 第22-29页 |
| 3.2.1 YKL-40蛋白表达 | 第22-27页 |
| 3.2.2 免疫荧光双标结果 | 第27-29页 |
| 3.3 RT-qPCR检测YKL-40mRNA的表达 | 第29-33页 |
| 3.3.1 RNA完整性的检测(琼脂糖凝胶电泳) | 第29页 |
| 3.3.2 标准曲线和扩增曲线 | 第29-31页 |
| 3.3.3 mRNA表达的相对定量分析 | 第31-33页 |
| 第四章 讨论 | 第33-38页 |
| 4.1 YKL-40在大鼠癫痫持续状态后海马的表达变化 | 第33-36页 |
| 4.2 YKL-40在大鼠癫痫持续状态后海马组织结构中的表达分布 | 第36-38页 |
| 第五章 结论 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-45页 |
| 综述 | 第45-61页 |
| 参考文献 | 第55-61页 |
| 致谢 | 第61页 |
