| 中文摘要 | 第5-7页 |
| 英文摘要 | 第7-8页 |
| 前言 | 第9-12页 |
| 材料与方法 | 第12-24页 |
| 1 实验材料 | 第12-14页 |
| 1.1 仪器设备 | 第12-13页 |
| 1.2 试剂耗材 | 第13-14页 |
| 2 实验方法 | 第14-24页 |
| 2.1 实验动物 | 第14页 |
| 2.2 激素缓释管制作和皮下置管手术 | 第14-16页 |
| 2.3 腹腔注射葡萄糖耐量实验和腹腔注射胰岛素耐量实验 | 第16页 |
| 2.4 雌鼠阴道涂片 | 第16-17页 |
| 2.5 原代胰岛分离和培养 | 第17-19页 |
| 2.6 原代胰岛处理 | 第19-20页 |
| 2.7 葡萄糖刺激胰岛素分泌实验和细胞内胰岛素抽提 | 第20-21页 |
| 2.8 放射免疫实验 | 第21-22页 |
| 2.9 酶联免疫吸附实验 | 第22页 |
| 2.10 血清脂质过氧化产物检测 | 第22-23页 |
| 2.11 统计学分析 | 第23-24页 |
| 结果 | 第24-37页 |
| 第一部分 DHT缓释管的选择和体内埋植效果验证 | 第24-29页 |
| 1 DHT缓释管的选择 | 第24-26页 |
| 2 缓释管体内埋植效果验证 | 第26-29页 |
| 第二部分 高DHT血症雄鼠构建及糖代谢表型检测 | 第29-37页 |
| 1 高DHT血症雄鼠构建 | 第29-30页 |
| 2 幼年开始造模的雄性造模鼠（PM）相关表型 | 第30-35页 |
| 2.1 DHT组（PM-DHT）糖耐量受损 | 第30-31页 |
| 2.2 PM-DHT组无明显的胰岛素抵抗 | 第31-33页 |
| 2.3 PM-DHT组胰岛 β 细胞功能受损 | 第33-34页 |
| 2.4 DHT或T处理，原代胰岛GSIS功能不受影响 | 第34-35页 |
| 2.5 PM-DHT组血清脂质过氧化产物增多 | 第35页 |
| 3 成年开始造模的雄性SD大鼠（AM）相关表型 | 第35-37页 |
| 分析与讨论 | 第37-41页 |
| 结论 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-51页 |
| 综述 | 第51-64页 |
| 参考文献 | 第61-64页 |
| 附录 | 第64-66页 |
| 攻读学位期间发表文章情况 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67页 |
