| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 英文缩略词表 | 第7-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-21页 |
| 1.1 平菇概述 | 第13页 |
| 1.2 平菇多糖的研究现状 | 第13-19页 |
| 1.2.1 平菇多糖的定义 | 第13-14页 |
| 1.2.2 平菇多糖的提取 | 第14-15页 |
| 1.2.3 平菇多糖的除杂 | 第15-16页 |
| 1.2.4 平菇多糖的纯化 | 第16页 |
| 1.2.5 平菇多糖的结构研究 | 第16-17页 |
| 1.2.6 平菇多糖的生物活性研究 | 第17-19页 |
| 1.3 本文研究意义及研究内容 | 第19-21页 |
| 1.3.1 研究意义 | 第19页 |
| 1.3.2 研究内容 | 第19页 |
| 1.3.3 创新点 | 第19-21页 |
| 第2章 平菇多糖的提取工艺优化 | 第21-33页 |
| 2.1 引言 | 第21页 |
| 2.2 试验材料与仪器 | 第21-22页 |
| 2.2.1 试验材料与试剂 | 第21-22页 |
| 2.2.2 试验仪器 | 第22页 |
| 2.3 试验方法 | 第22-24页 |
| 2.3.1 平菇干粉制备 | 第22页 |
| 2.3.2 POP的提取工艺 | 第22页 |
| 2.3.3 单因素试验 | 第22-23页 |
| 2.3.4 均匀设计试验 | 第23页 |
| 2.3.5 POP的得率 | 第23页 |
| 2.3.6 试验统计与分析 | 第23-24页 |
| 2.4 结果分析 | 第24-31页 |
| 2.4.1 单因素试验 | 第24-28页 |
| 2.4.2 均匀设计试验 | 第28-31页 |
| 2.5 本章小结 | 第31-33页 |
| 第3章 平菇多糖的分离纯化 | 第33-43页 |
| 3.1 引言 | 第33页 |
| 3.2 试验材料与仪器 | 第33-34页 |
| 3.2.1 试验材料与试剂 | 第33页 |
| 3.2.2 试验仪器 | 第33-34页 |
| 3.3 试验方法 | 第34-37页 |
| 3.3.1 平菇粗多糖分离纯化工艺 | 第34页 |
| 3.3.2 POP的色素脱除 | 第34页 |
| 3.3.3 POP的游离蛋白质脱除 | 第34-35页 |
| 3.3.4 POP的透析除杂 | 第35页 |
| 3.3.5 POP的DEAE-52纤维素柱层析 | 第35-36页 |
| 3.3.6 POP的SEPHADEX G-100凝胶柱层析 | 第36页 |
| 3.3.7 POP的含糖量测定 | 第36-37页 |
| 3.4 结果与分析 | 第37-41页 |
| 3.4.1 POP的色素脱除结果 | 第37页 |
| 3.4.2 POP的游离蛋白脱除结果 | 第37-38页 |
| 3.4.3 POP的透析除杂结果 | 第38-39页 |
| 3.4.4 POP的DEAE-52纤维素柱层析结果 | 第39页 |
| 3.4.5 POP的SEPHADEX G-100葡聚糖凝胶柱层析结果 | 第39-40页 |
| 3.4.6 POP的含糖量测定 | 第40-41页 |
| 3.5 本章小结 | 第41-43页 |
| 第4章 平菇多糖的结构表征 | 第43-57页 |
| 4.1 引言 | 第43页 |
| 4.2 试验材料与仪器 | 第43-44页 |
| 4.2.1 试验材料与试剂 | 第43-44页 |
| 4.2.2 试验仪器 | 第44页 |
| 4.3 试验方法 | 第44-46页 |
| 4.3.1 紫外光谱扫描 | 第44页 |
| 4.3.2 刚果红试验 | 第44页 |
| 4.3.3 碘-碘化钾反应 | 第44页 |
| 4.3.4 B-消去反应 | 第44-45页 |
| 4.3.5 红外光谱扫描 | 第45页 |
| 4.3.6 环境扫描电镜观察 | 第45页 |
| 4.3.7 不同外界因素对POP-Ⅰ构象的影响 | 第45页 |
| 4.3.8 分子量测定 | 第45页 |
| 4.3.9 气相色谱试验 | 第45-46页 |
| 4.3.10 数据分析 | 第46页 |
| 4.4 结果与分析 | 第46-55页 |
| 4.4.1 紫外扫描光谱 | 第46-47页 |
| 4.4.2 刚果红试验 | 第47-48页 |
| 4.4.3 碘-碘化钾反应 | 第48页 |
| 4.4.4 B-消去反应 | 第48-49页 |
| 4.4.5 红外光谱扫描 | 第49页 |
| 4.4.6 POP-Ⅰ的环境扫描电镜观察 | 第49-50页 |
| 4.4.7 不同外界因素对POP-Ⅰ构象的影响 | 第50-53页 |
| 4.4.8 POP-Ⅰ的分子量测定 | 第53-54页 |
| 4.4.9 POP-Ⅰ的GC-MS分析 | 第54-55页 |
| 4.5 本章小结 | 第55-57页 |
| 第5章 平菇多糖的免疫调节活性研究 | 第57-73页 |
| 5.1 引言 | 第57页 |
| 5.2 试验材料与仪器 | 第57-58页 |
| 5.2.1 试验材料与试剂 | 第57-58页 |
| 5.2.2 试验仪器 | 第58页 |
| 5.3 试验方法 | 第58-60页 |
| 5.3.1 POP的提取 | 第58页 |
| 5.3.2 试验动物的分组及给药 | 第58页 |
| 5.3.3 体重变化趋势测定 | 第58页 |
| 5.3.4 计算小鼠免疫器官指数 | 第58-59页 |
| 5.3.5 脾淋巴细胞增殖率测定 | 第59页 |
| 5.3.6 计算小鼠心、肾、肝及肝周脂肪指数 | 第59页 |
| 5.3.7 计算小鼠睾丸、附睾及附睾脂肪指数 | 第59页 |
| 5.3.8 小鼠迟发型超敏反应 | 第59-60页 |
| 5.3.9 小鼠全血四项指标测定 | 第60页 |
| 5.3.10 小鼠LDH及ACP测定 | 第60页 |
| 5.3.11 小鼠血清指标测定 | 第60页 |
| 5.3.12 小鼠肝组织抗氧化指标测定 | 第60页 |
| 5.3.14 数据统计分析 | 第60页 |
| 5.4 结果与分析 | 第60-71页 |
| 5.4.1 POP对小鼠体重的影响 | 第60-62页 |
| 5.4.2 POP对小鼠免疫器官及脾T淋巴细胞增殖能力的影响 | 第62页 |
| 5.4.3 POP对心脏、肾、肝及肝周脂肪指数的影响 | 第62-63页 |
| 5.4.4 POP对睾丸、附睾及附睾脂肪指数的影响 | 第63-64页 |
| 5.4.5 POP对小鼠迟发型超敏反应的影响 | 第64页 |
| 5.4.6 小鼠全血四项指标测定 | 第64-65页 |
| 5.4.7 POP对小鼠脾脏组织LDH及ACP活性的影响 | 第65-66页 |
| 5.4.8 小鼠血清指标测定 | 第66-69页 |
| 5.4.9 肝组织抗氧化指标测定 | 第69-71页 |
| 5.5 本章小结 | 第71-73页 |
| 第6章 结论 | 第73-75页 |
| 6.1 结论 | 第73页 |
| 6.2 展望 | 第73-75页 |
| 参考文献 | 第75-83页 |
| 致谢 | 第83-85页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第85页 |
