| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 前言 | 第10-25页 |
| 第一章 毛细管电泳—RU(BPY)_3~(2+)电化学发光检测脯氨酸肽酶活性方法的建立及其在研究糖尿病胶原代谢研究中的应用 | 第25-51页 |
| 1.1 引言 | 第25-27页 |
| 1.2 实验部分 | 第27-32页 |
| 1.2.1 药品与试剂 | 第27-28页 |
| 1.2.2 糖尿病患者样本 | 第28页 |
| 1.2.3 仪器 | 第28-30页 |
| 1.2.4 实验步骤 | 第30-32页 |
| 1.2.4.1 电极的制备 | 第30页 |
| 1.2.4.2 血浆和血清的提取 | 第30-31页 |
| 1.2.4.3 血红细胞的提取 | 第31页 |
| 1.2.4.4 溶液中的酶催化反应 | 第31页 |
| 1.2.4.5 Chinard法 | 第31-32页 |
| 1.2.4.6 统计分析 | 第32页 |
| 1.3 结果和讨论 | 第32-47页 |
| 1.3.1 标准脯氨酸的测定 | 第32-35页 |
| 1.3.1.1 酶反应体系缓冲溶液的选择 | 第32-34页 |
| 1.3.1.2 脯氨酸的测定 | 第34-35页 |
| 1.3.2 PLD最佳检测条件的确定 | 第35-40页 |
| 1.3.2.1 Mn~(2+)浓度 | 第35-36页 |
| 1.3.2.2 底物甘氨酰-L-脯氨酸浓度的选择 | 第36-37页 |
| 1.3.2.3 反应体系pH值的选择 | 第37-38页 |
| 1.3.2.4 孵育时间的影响 | 第38-39页 |
| 1.3.2.5 终止反应 | 第39-40页 |
| 1.3.3 PLD活性的测定 | 第40-42页 |
| 1.3.4 红细胞溶膜液PLD活性的测定 | 第42页 |
| 1.3.5 糖尿病PLD活性研究 | 第42-47页 |
| 1.3.5.1 所测45例血清PLD活性 | 第42-44页 |
| 1.3.5.2 统计分析 | 第44-47页 |
| 1.4 结论 | 第47-48页 |
| 1.5 参考文献 | 第48-51页 |
| 第二章 CE-ECL研究几种水溶性维生素及非甾体抗炎药对红细胞脯氨酸肽酶活性的影响及脯氨酸肽酶的动力学常数 | 第51-68页 |
| 2.1 引言 | 第51-53页 |
| 2.2 实验部分 | 第53-55页 |
| 2.2.1 药品与试剂 | 第53页 |
| 2.2.2 仪器 | 第53-54页 |
| 2.2.3 血红细胞的提取 | 第54页 |
| 2.2.4 溶液中的酶催化反应 | 第54页 |
| 2.2.5 半数抑制浓度IC_(50)的求取 | 第54页 |
| 2.2.6 PLD米氏常数Km、最大反应速率Vmax及抑制常数Ki的求取 | 第54-55页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第55-65页 |
| 2.3.1 脯氨酸的定量 | 第55页 |
| 2.3.2 各种维生素对酶浓度的影响 | 第55-58页 |
| 2.3.3 四种NSAIDs对PLD活性的影响 | 第58-59页 |
| 2.3.4 维生素H对PLD抑制作用的研究 | 第59-63页 |
| 2.3.4.1 维生素H对脯氨酸肽酶IC_(50)的求取 | 第59-60页 |
| 2.3.4.2 维生素H抑制作用性质研究 | 第60-63页 |
| 2.3.5 扑热息痛对脯氨酸肽酶活性的抑制 | 第63-65页 |
| 2.3.5.1 扑热息痛抑制作用性质的研究 | 第63-64页 |
| 2.3.5.2 扑热息痛的抑制常数Ki的求取 | 第64-65页 |
| 2.4 结论 | 第65-66页 |
| 2.5 参考文献 | 第66-68页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第68-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第70页 |
