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牛布鲁氏菌毒力基因VirB5间接ELISA检测方法的建立及应用

摘要第4-5页
Abstract第5-6页
引用缩写符号说明第10-11页
第一章 文献综述第11-21页
    1.1 布鲁氏菌病概述第11-12页
    1.2 布鲁氏菌病的危害第12-13页
    1.3 布鲁氏菌病原学第13页
    1.4 布鲁氏菌病的诊断第13-18页
        1.4.1 病原学检测第14-18页
        1.4.2 存在的问题及发展方向第18页
    1.5 IV型分泌系统的研究进展第18-19页
    1.6 本研究的目的与意义第19-21页
第二章 牛布鲁氏菌四种血清学检测方法的比较分析第21-33页
    2.1 材料第21-22页
        2.1.1 血清样品第21页
        2.1.2 主要试剂第21页
        2.1.3 主要仪器耗材第21-22页
        2.1.4 主要溶液配制第22页
    2.2 方法第22-28页
        2.2.1 RBPT第22-23页
        2.2.2 试管凝集实验第23-24页
        2.2.3 酶联免疫吸附实验第24-26页
        2.2.4 补体结合实验第26-27页
        2.2.5 Kappa值的计算第27-28页
    2.3 结果第28-30页
        2.3.1 四种血清学检测阳性率结果第28页
        2.3.2 RBPT与ELISA检测结果比较第28-29页
        2.3.3 SAT与CFT检测结果比较第29页
        2.3.4 四种检测方法相关性比较第29-30页
    2.4 讨论第30-31页
    2.5 小结第31-33页
第三章 牛布鲁氏菌VirB5蛋白原核表达和鉴定第33-49页
    3.1 材料第33-35页
        3.1.1 菌株、质粒和血清第33-34页
        3.1.2 工具酶和主要试剂第34页
        3.1.3 主要仪器耗材第34页
        3.1.4 主要溶液配制第34-35页
    3.2 方法第35-43页
        3.2.1 引物的设计与合成第35页
        3.2.2 布鲁氏菌DNA的提取第35-36页
        3.2.3 VirB5基因的扩增第36页
        3.2.4 PCR产物的回收第36-37页
        3.2.5 重组质粒pET32a(+)-VirB5的构建第37-40页
        3.2.6 目的蛋白的诱导表达第40页
        3.2.7 SDS-PAGE电泳第40-41页
        3.2.8 蛋白样品超声破碎第41-42页
        3.2.9 重组蛋白pET32a(+)-VirB5的纯化第42-43页
        3.2.10 重组蛋白的Western blot第43页
    3.3 结果第43-46页
        3.3.1 VirB5基因PCR扩增结果第43-44页
        3.3.2 pET32a(+)-VirB5重组质粒的构建及鉴定第44-45页
        3.3.3 重组蛋白VirB5的表达及纯化第45页
        3.3.4 表达蛋白的纯化第45页
        3.3.5 重组蛋白Western blot鉴定结果第45-46页
    3.4 讨论第46-49页
第四章 间接ELISA检测方法的建立与应用第49-61页
    4.1 材料第49-50页
        4.1.1 主要试剂第49页
        4.1.2 抗原第49页
        4.1.3 血清第49页
        4.1.4 主要试剂制备第49-50页
    4.2 方法第50-52页
        4.2.1 重组抗原间接ELISA方法的建立第50-51页
        4.2.2 临界值的确定第51页
        4.2.3 特异性实验第51页
        4.2.4 敏感性实验第51-52页
        4.2.5 重复性实验第52页
        4.2.6 对比实验第52页
    4.3 结果第52-58页
        4.3.1 最佳抗原包被浓度和血清稀释度的确定第52-53页
        4.3.2 间接ELISA最佳工作条件的确定第53-58页
    4.4 讨论第58-61页
第五章 全文结论第61-63页
参考文献第63-69页
附录第69-75页
致谢第75-77页
作者简历第77页

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