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银耳“杨梅霜”病原菌的分离、鉴定及特性研究

摘要第10-13页
Abstract第13-15页
第一章 前言第16-27页
    1 银耳生产概况第16页
        1.1 生产技术的发展史与生产现状第16页
        1.2 古田县地理环境与银耳生产的关系第16页
    2 “杨梅霜”病的发生与防治第16-17页
        2.1 关于银耳“杨梅霜”病第16-17页
        2.2 “杨梅霜”病的防治措施第17页
    3 病害鉴定方法的研究进展第17-18页
    4 放线菌的多样性第18-20页
        4.1 土壤放线菌第18-19页
        4.2 水生放线菌第19页
        4.3 动植物内生放线菌第19-20页
        4.4 食用菌栽培料中的放线菌第20页
    5 放线菌的分类鉴定第20-22页
        5.1 多相分类第20-22页
        5.2 链霉菌属多相分类特征第22页
    6 提高抗生素产量的方法第22-25页
        6.1 菌种的选育第22-23页
        6.2 发酵优化第23-24页
        6.3 抗生素提取工艺的改进第24-25页
    7 本课题的目的与意义第25-27页
第二章 银耳“杨梅霜”病原菌的分离第27-37页
    1 实验材料第27-28页
        1.1 供试菌株第27页
        1.2 培养基第27页
        1.3 试剂与仪器第27-28页
    2 实验方法第28-31页
        2.1 病原菌的分离与纯化第28页
        2.2 分离菌株的去重复第28-30页
            2.2.1 Js-1~T、Js-2、Js-3菌株培养特征的观察第28页
            2.2.2 Js-1~T、Js-2、Js-3菌株的ARDRA分析第28-30页
        2.3 Js-1~T菌株回接银耳菌袋第30-31页
            2.3.1 Js-1~T菌株液体菌种的制备第30页
            2.3.2 银耳栽培袋的制作第30页
            2.3.3 Js-1~T菌株回接银耳菌袋第30-31页
            2.3.4 银耳出菇管理第31页
            2.3.5 回接菌袋中病原菌的再分离第31页
        2.4 Js-1~T菌株致病原因的初步研究第31页
    3 结果与分析第31-35页
        3.1 病原菌的分离纯化第31页
        3.2 Js-1~T、Js-2、Js-3菌株的培养特征第31-32页
        3.3 Js-1~T、Js-2、Js-3菌株的ARDRA分析第32-33页
            3.3.1 Js-1~T、Js-2、Js-3菌株16S rDNA的扩增第32页
            3.3.2 16S rDNA限制性酶切片段长度多态分析第32-33页
        3.4 致病性试验第33-34页
            3.4.1 回接菌袋的发病状况第33-34页
            3.4.2 人工致病的病原菌分离与鉴定第34页
        3.5 Js-1~T菌株的致病原因第34-35页
    4 讨论第35-37页
第三章 Js-1~T菌株的鉴定第37-58页
    1 实验材料第37-38页
        1.1 供试菌株第37页
        1.2 培养基及配制方法第37-38页
        1.3 试剂与仪器第38页
    2 实验方法第38-44页
        2.1 Js-1~T菌株基因组DNA的提取第38页
        2.2 Js-1~T菌株16S rDNA分析第38-40页
            2.2.1 Js-1~T菌株16S rDNA的扩增第38页
            2.2.2 Js-1~T菌株16S rDNA的纯化第38页
            2.2.3 Js-1~T菌株16S rDNA的克隆第38-40页
            2.2.4 Js-1~T菌株16S rDNA的测序第40页
            2.2.5 Js-1~T菌株16S rDNA序列分析第40页
            2.2.6 Js-1~T菌株的系统发育分析第40页
        2.3 Js-1~T菌株表观特征观察第40页
            2.3.1 形态观察第40页
            2.3.2 培养特征第40页
        2.4 Js-1~T菌株生理生化特性的分析第40-43页
            2.4.1 生长温度范围的确定第40-41页
            2.4.2 生长pH范围的确定第41页
            2.4.3 NaCl耐受性测定第41页
            2.4.4 碳源利用实验第41页
            2.4.5 MR实验第41页
            2.4.6 酶学特性第41-42页
            2.4.7 黑色素产生实验第42页
            2.4.8 脂肪酸测定第42-43页
        2.5 分子分类第43-44页
            2.5.1 ARDRA分析第43页
            2.5.2 Js-1~T菌株(G+C)mol%测定第43页
            2.5.3 DNA-DNA分子杂交第43-44页
    3 结果与分析第44-56页
        3.1 Js-1~T菌株的16S rDNA分析第44-47页
            3.1.1 16S rDNA的扩增结果第44页
            3.1.2 16S rDNA阳性克隆的筛选第44-45页
            3.1.3 16S rDNA测序结果第45页
            3.1.4 Js-1~T菌株的系统发育分析第45-47页
        3.2 Js-1~T菌株表观特征观察第47-48页
            3.2.1 Js-1~T菌株的形态观察第47-48页
            3.2.2 Js-1~T菌株的培养特征第48页
        3.3 Js-1~T菌株的生理生化特征第48-54页
            3.3.1 Js-1~T菌株的生长温度范围第48页
            3.3.2 Js-1~T菌株的生长pH范围第48-49页
            3.3.3 Js-1~T菌株的NaCl耐受性第49页
            3.3.4 Js-1~T菌株的碳源利用实验第49-50页
            3.3.5 MR实验第50页
            3.3.6 Js-1~T菌株的酶学特性第50页
            3.3.7 黑色素产生实验第50-51页
            3.3.8 Js-1~T菌株的脂肪酸测定第51页
            3.3.9 Js-1~T菌株与近缘菌株表观特征的差异第51-54页
        3.4 分子分类第54-56页
            3.4.1 ARDRA分析第54-55页
            3.4.2 Js-1~T菌株(G+C)mol%测定第55页
            3.4.3 DNA-DNA分子杂交第55-56页
    4 讨论第56-57页
    5 Streptomyces fujianensis的描述第57-58页
第四章 链霉菌Js-1~T抗菌谱的测定第58-63页
    1 实验材料第58-59页
        1.1 菌株第58页
        1.2 培养基第58页
        1.3 主要仪器第58-59页
    2 实验方法第59-60页
        2.1 Js-1~T菌株的活化第59页
        2.2 Js-1~T菌株对细菌的抑制作用第59页
        2.3 Js-1~T菌株对真菌的抑制作用第59页
        2.4 Js-1~T菌株发酵液对食用菌的影响第59-60页
    3 结果与分析第60-61页
        3.1 Js-1~T对细菌的抑制作用第60页
        3.2 Js-1~T对真菌的抑制作用第60-61页
        3.3 Js-1~T菌株发酵液对食用菌的影响第61页
    4 讨论第61-63页
第五章 Js-1~T菌株发酵条件的初步研究第63-77页
    1 实验材料第63页
        1.1 供试菌株第63页
        1.2 培养基第63页
        1.3 主要仪器第63页
    2 实验方法第63-66页
        2.1 Js-1~T菌株种子培养液的制备第63页
        2.2 发酵液活性的测定方法第63-64页
        2.3 发酵培养基成分筛选第64-65页
            2.3.1 碳源筛选第64页
            2.3.2 氮源筛选第64页
            2.3.3 碳源添加量试验第64页
            2.3.4 氮源添加量试验第64-65页
        2.4 发酵条件优化第65-66页
            2.4.1 温度对Js-1~T菌株发酵拮抗物质的影响第65页
            2.4.2 初始pH对Js-1~T菌株发酵拮抗物质的影响第65页
            2.4.3 接种量对Js-1~T菌株发酵拮抗物质的影响第65页
            2.4.4 装液量对Js-1~T菌株发酵拮抗物质的影响第65页
            2.4.5 培养条件正交优化第65-66页
        2.5 拮抗物质稳定性实验第66页
            2.5.1 热稳定性第66页
            2.5.2 酸碱稳定性第66页
        2.6 发酵液效价的测定第66页
    3 结果与分析第66-76页
        3.1 发酵培养基成分筛选第66-70页
            3.1.1 碳源筛选第66-67页
            3.1.2 氮源筛选第67-68页
            3.1.3 碳源添加量试验第68-69页
            3.1.4 氮源添加量试验第69-70页
        3.2 发酵条件优化第70-74页
            3.2.1 温度对Js-1~T菌株发酵拮抗物质的影响第70-71页
            3.2.2 初始pH对Js-1~T菌株发酵拮抗物质的影响第71页
            3.2.3 接种量对Js-1~T菌株发酵拮抗物质的影响第71-72页
            3.2.4 装液量对Js-1~T菌株发酵拮抗物质的影响第72-73页
            3.2.5 培养条件正交优化第73-74页
        3.3 拮抗物质稳定性实验第74-75页
            3.3.1 热稳定性第74页
            3.3.2 pH稳定性第74-75页
        3.4 发酵液效价测定第75-76页
    3 结论与讨论第76-77页
参考文献第77-82页
致谢第82-83页
附录Ⅰ第83-89页
附录Ⅱ第89-90页

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