| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 目录 | 第8-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-33页 |
| 1 木薯研究进展 | 第11-14页 |
| 1.1 木薯的生物学特性 | 第11-12页 |
| 1.2 木薯的经济利用价值 | 第12页 |
| 1.3 木薯的耐旱性研究 | 第12-14页 |
| 2 干旱胁迫的研究背景和进展 | 第14-20页 |
| 2.1 干旱对全球农业的影响 | 第14页 |
| 2.2 干旱胁迫对植物的伤害 | 第14-15页 |
| 2.2.1 植物生长发育受到抑制 | 第14-15页 |
| 2.2.2 干旱胁迫对植物光合作用的影响 | 第15页 |
| 2.2.3 活性氧能对植物产生伤害 | 第15页 |
| 2.3 植物响应干旱胁迫的分子机理 | 第15-20页 |
| 2.3.1 植物缺水的形态适应 | 第15-16页 |
| 2.3.2 渗透势在植物抗旱中的重要作用 | 第16-17页 |
| 2.3.3 渗透物质在植物抗旱性中的重要作用 | 第17页 |
| 2.3.4 抗旱相关基因 | 第17-19页 |
| 2.3.5 干旱胁迫信号的感受及信号转导 | 第19-20页 |
| 3 蛋白质组学的研究进展 | 第20-31页 |
| 3.1 蛋白质组学的产生背景 | 第20页 |
| 3.2 蛋白质组学的研究内容 | 第20-21页 |
| 3.3 植物蛋白质组学的研究进展 | 第21-31页 |
| 3.3.1 植物蛋白质组学的研究技术 | 第21-28页 |
| 3.3.2 植物亚细胞的蛋白质组学研究 | 第28页 |
| 3.3.3 植物组织、器官的蛋白质组学研究 | 第28-29页 |
| 3.3.4 磷酸化修饰的蛋白质组学研究 | 第29页 |
| 3.3.5 干旱胁迫的蛋白质组学研究 | 第29-31页 |
| 4 本实验的研究内容和目的意义 | 第31-32页 |
| 本研究的技术路线 | 第32-33页 |
| 第二章 干早胁迫下木薯形态特征及叶肉细胞结构变化研究 | 第33-39页 |
| 2.1 材料和方法 | 第33-34页 |
| 2.1.1 木薯材料的种植 | 第33页 |
| 2.1.2 干旱处理不同时期木薯的形态学观察 | 第33页 |
| 2.1.3 透射电子显微镜观察 | 第33-34页 |
| 2.2 结果与分析 | 第34-37页 |
| 2.2.1 木薯在干旱处理不同时期的生长状态 | 第34页 |
| 2.2.2 干旱处理不同时期木薯叶片叶肉细胞超显微结构变化 | 第34-37页 |
| 2.3 讨论 | 第37-39页 |
| 2.3.1 木薯适应干旱胁迫的形态变化 | 第37页 |
| 2.3.2 木薯叶肉细胞质膜系统适应干旱胁迫的结构变化 | 第37-38页 |
| 2.3.3 木薯叶绿体适应干旱胁迫的结构变化 | 第38页 |
| 2.3.4 木薯叶肉细胞叶绿体淀粉粒适应干旱胁迫的变化 | 第38-39页 |
| 第三章 干旱胁迫下木薯叶片磷酸化蛋白的蛋白组学研究 | 第39-61页 |
| 3.1 材料和方法 | 第39-44页 |
| 3.1.1 木薯材料的种植和采集 | 第39页 |
| 3.1.2 主要试剂和仪器 | 第39-40页 |
| 3.1.3 木薯叶片总蛋白的提取 | 第40页 |
| 3.1.4 蛋白定量 | 第40页 |
| 3.1.5 常规双向电泳技术 | 第40-41页 |
| 3.1.6 染色方法及扫描 | 第41-42页 |
| 3.1.6.1 考马斯亮蓝染色及扫描 | 第41页 |
| 3.1.6.2 Pro-Q Diamond和SYPRO Ruby染色及扫描 | 第41-42页 |
| 3.1.7 凝胶蛋白点差异分析 | 第42页 |
| 3.1.8 胶内酶解及质谱鉴定 | 第42-43页 |
| 3.1.9 鉴定蛋白的生物信息学分析 | 第43-44页 |
| 3.2 结果与分析 | 第44-55页 |
| 3.2.1 BPP法蛋白提取的优点 | 第44-45页 |
| 3.2.2 Pro-Q Diamond和SYPRO Ruby染色方法的建立 | 第45-46页 |
| 3.2.3 木薯叶片在干旱胁迫下磷酸化蛋白的差异表达分析 | 第46页 |
| 3.2.4 质谱分析 | 第46-52页 |
| 3.2.5 木薯干旱胁迫叶片差异表达磷酸化蛋白功能分类 | 第52-55页 |
| 3.2.5.1 参与光合作用的蛋白 | 第53页 |
| 3.2.5.2 参与能量代谢的蛋白 | 第53页 |
| 3.2.5.3 参与碳代谢相关的蛋白 | 第53-54页 |
| 3.2.5.4 参与胁迫、防御及应激反应的蛋白 | 第54页 |
| 3.2.5.5 结合蛋白 | 第54页 |
| 3.2.5.6 参与转录翻译相关的蛋白 | 第54页 |
| 3.2.5.7 未知蛋白 | 第54-55页 |
| 3.2.6 已鉴定木薯叶片磷酸化差异蛋白Blast2GO分析 | 第55页 |
| 3.3 讨论 | 第55-61页 |
| 3.3.1 磷酸化蛋白的检出 | 第55-56页 |
| 3.3.2 许多光合作用相关蛋白参与木薯对干旱胁迫的适应 | 第56-58页 |
| 3.3.3 能量代谢和碳代谢相关磷酸化蛋白参与了木薯的抗旱反应 | 第58-59页 |
| 3.3.4 干旱胁迫促进植物的应激反应和抗氧化蛋白的表达 | 第59-60页 |
| 3.3.5 蛋白质的翻译起始因子和延伸因子参与木薯的抗旱作用 | 第60-61页 |
| 第四章 干旱胁迫下木薯叶绿体蛋白的比较蛋白组学研究 | 第61-77页 |
| 4.1 材料和方法 | 第61-64页 |
| 4.1.1 木薯材料的种植和采集 | 第61页 |
| 4.1.2 叶绿体的收集 | 第61页 |
| 4.1.3 木薯叶绿体蛋白的提取 | 第61-62页 |
| 4.1.4 蛋白定量 | 第62页 |
| 4.1.5 常规双向电泳技术 | 第62-63页 |
| 4.1.6 胶内酶解及质谱鉴定 | 第63页 |
| 4.1.7 质谱数据库搜索及生物信息学功能分析 | 第63-64页 |
| 4.2 结果与分析 | 第64-69页 |
| 4.2.1 干旱胁迫木薯叶绿体蛋白常规双向电泳图谱的获得 | 第64-65页 |
| 4.2.2 干旱胁迫木薯叶绿体蛋白差异表达分析 | 第65-67页 |
| 4.2.3 MALDI TOF/TOF MS质谱分析 | 第67-68页 |
| 4.2.4 木薯干旱胁迫木薯叶绿体差异表达蛋白的功能分类 | 第68-69页 |
| 4.3 讨论 | 第69-77页 |
| 4.3.1 木薯叶绿体蛋白组学的研究 | 第69页 |
| 4.3.2 许多光合作用相关的蛋白参与了木薯的干旱适应过程 | 第69-70页 |
| 4.3.3 能量相关蛋白参与了木薯的抗旱反应 | 第70-71页 |
| 4.3.4 干旱胁迫能促进木薯中抗氧化和解毒相关蛋白的表达 | 第71-77页 |
| 第五章 结论 | 第77-79页 |
| 参考文献 | 第79-89页 |
| 附录 | 第89-93页 |
| 致谢 | 第93-94页 |
