中文摘要 | 第5-8页 |
Abstract | 第8-10页 |
第1章 综述 | 第15-35页 |
1.1 神经胶质瘤概述 | 第15-22页 |
1.1.1 神经胶质瘤的分类 | 第15-22页 |
1.1.1.1 星形胶质瘤 | 第16-17页 |
1.1.1.2 少突胶质肿瘤 | 第17-18页 |
1.1.1.3 室管膜肿瘤 | 第18页 |
1.1.1.4 脉络丛肿瘤 | 第18-19页 |
1.1.1.5 来源未定的神经上皮肿瘤 | 第19-20页 |
1.1.1.6 神经细胞肿瘤和神经元与胶质细胞混合的肿瘤 | 第20页 |
1.1.1.7 松果体肿瘤 | 第20-21页 |
1.1.1.8 髓母细胞瘤 | 第21-22页 |
1.2 神经胶质瘤治疗进展 | 第22-30页 |
1.2.1 神经胶质瘤的手术治疗 | 第22-24页 |
1.2.1.1 显微外科手术 | 第23页 |
1.2.1.2 神经导航手术 | 第23页 |
1.2.1.3 其他手术方法 | 第23-24页 |
1.2.2 神经胶质瘤的放射治疗 | 第24-26页 |
1.2.2.1 常规放射治疗技术 | 第25页 |
1.2.2.2 立体定向放射治疗技术 | 第25页 |
1.2.2.3 适形放疗技术 | 第25-26页 |
1.2.2.4 间质内放疗 | 第26页 |
1.2.3 神经胶质瘤的化学治疗 | 第26-28页 |
1.2.3.1 常规系统化学治疗 | 第26-27页 |
1.2.3.2 放疗后联合化疗 | 第27页 |
1.2.3.3 其他化学治疗方法 | 第27-28页 |
1.2.4 神经胶质瘤的基因治疗 | 第28-29页 |
1.2.5 其他治疗方法 | 第29-30页 |
1.3 地喹氯铵抗微生物研究进展 | 第30-32页 |
1.3.1 地喹氯铵抗结核杆菌的作用 | 第31页 |
1.3.2 地喹氯铵在阴道炎治疗中的应用 | 第31-32页 |
1.4 地喹氯铵抗肿瘤研究进展 | 第32-35页 |
1.4.1 地喹氯铵与肠道肿瘤 | 第32页 |
1.4.2 地喹氯铵与黑色素瘤 | 第32-33页 |
1.4.3 地喹氯铵与白血病 | 第33-34页 |
1.4.4 地喹氯铵最新应用 | 第34页 |
1.4.5 地喹氯铵与神经胶质瘤 | 第34-35页 |
第2章 神经胶质瘤表观治疗药物预测结果 | 第35-53页 |
2.1 基于人脑胶质瘤发病相关基因预测新型表观治疗药物 | 第35-40页 |
2.2 基于人脑胶质瘤发病相关基因预测新型表观治疗药物 | 第40-43页 |
2.2.1 胶质瘤表观治疗药物预测 | 第40-43页 |
2.2.2 胶质瘤表观治疗药物预测结果 | 第43页 |
2.3 神经胶质瘤发病的特异性基因序列标签 | 第43-49页 |
2.4 神经胶质瘤发病相关基因聚类分析结果 | 第49-53页 |
2.4.1 功能注释聚类 | 第49-50页 |
2.4.2 核分裂 | 第50页 |
2.4.3 有丝分裂 | 第50-51页 |
2.4.4 细胞周期 M 期 | 第51页 |
2.4.5 泛素化结合 | 第51-53页 |
第3章 地喹氯铵对神经胶质瘤细胞的体外作用及机制研究 | 第53-65页 |
3.1 实验材料 | 第53-54页 |
3.1.1 主要仪器 | 第53页 |
3.1.2 主要试剂 | 第53-54页 |
3.1.3 细胞株 | 第54页 |
3.1.4 药品配制 | 第54页 |
3.2 实验方法 | 第54-57页 |
3.2.1 MTT 法检测地喹氯铵对神经胶质瘤细胞的生长抑制作用 | 第54-55页 |
3.2.1.1 试剂配制 | 第54页 |
3.2.1.2 操作流程 | 第54-55页 |
3.2.2 基因组 DNA 电泳检测细胞凋亡 | 第55页 |
3.2.3 DAPI 染色检测细胞凋亡 | 第55-56页 |
3.2.3.1 DAPI 染色液配制 | 第55-56页 |
3.2.3.2 操作步骤 | 第56页 |
3.2.4 Tunel 法染色检测细胞凋亡 | 第56-57页 |
3.3 实验结果 | 第57-62页 |
3.3.1 MTT 法检测地喹氯铵对神经胶质瘤细胞的生长抑制作用 | 第57-60页 |
3.3.2 基因组 DNA 琼脂糖凝胶电泳检测 | 第60-61页 |
3.3.3 DAPI 染色结果 | 第61页 |
3.3.4 TUNEL 染色结果 | 第61-62页 |
3.4 讨论 | 第62-64页 |
3.5 小结 | 第64-65页 |
第4章 地喹氯铵对神经胶质瘤细胞的体内作用研究 | 第65-73页 |
4.1 实验材料 | 第65-66页 |
4.1.1 主要仪器 | 第65页 |
4.1.2 主要试剂 | 第65页 |
4.1.3 实验动物 | 第65-66页 |
4.1.4 药品配制 | 第66页 |
4.2 实验方法 | 第66-68页 |
4.2.1 动物模型建立 | 第66页 |
4.2.1.1 细胞培养及处理 | 第66页 |
4.2.1.2 BALB/C 裸鼠荷 SHG44 肿瘤模型建立 | 第66页 |
4.2.2 实验动物分组 | 第66-67页 |
4.2.3 抑瘤率计算 | 第67-68页 |
4.3 统计学方法 | 第68页 |
4.4 结果 | 第68-71页 |
4.4.1 一般情况观察 | 第68页 |
4.4.2 BALB/C 裸鼠体重变化 | 第68-69页 |
4.4.3 肿瘤体积生长曲线 | 第69页 |
4.4.4 肿瘤相对增殖率 | 第69-70页 |
4.4.5 DECA 抑瘤率 | 第70-71页 |
4.5 讨论 | 第71-72页 |
4.6 小结 | 第72-73页 |
第5章 地喹氯铵对神经胶质瘤作用机制探讨 | 第73-85页 |
5.1 实验材料 | 第73-74页 |
5.1.1 主要仪器 | 第73页 |
5.1.2 主要试剂 | 第73-74页 |
5.1.3 细胞 | 第74页 |
5.1.4 药物配制 | 第74页 |
5.2 实验方法 | 第74-80页 |
5.2.1 细胞传代培养及药物刺激 | 第74-75页 |
5.2.2 细胞及组织 RNA 提取 | 第75页 |
5.2.3 逆转录反应 | 第75-76页 |
5.2.4 PCR 扩增 | 第76-78页 |
5.2.5 Western blot 检测细胞和组织中凋亡相关蛋白的表达 | 第78-80页 |
5.2.5.1 试剂配制 | 第78-79页 |
5.2.5.2 操作流程 | 第79-80页 |
5.3 实验结果 | 第80-83页 |
5.3.1 通路相关蛋白筛选 PCR 实验结果 | 第80-81页 |
5.3.2 WB 方法检测 SHG44 细胞中凋亡相关蛋白表达 | 第81-82页 |
5.3.3 WB 方法检测 SHG44 细胞移植瘤中凋亡相关蛋白表达 | 第82-83页 |
5.4 讨论 | 第83-84页 |
5.5 小结 | 第84-85页 |
第6章 结论 | 第85-87页 |
参考文献 | 第87-96页 |
作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第96-97页 |
致谢 | 第97页 |