| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 缩略语/符号说明 | 第15-18页 |
| 前言 | 第18-21页 |
| 研究现状、成果 | 第18-19页 |
| 研究目的、方法 | 第19-21页 |
| 一、瑞芬太尼痛觉过敏大鼠脊髓PICK1表达水平的变化 | 第21-38页 |
| 1.1 对象和方法 | 第21-31页 |
| 1.1.1 实验材料 | 第21-23页 |
| 1.1.1.1 实验动物 | 第21页 |
| 1.1.1.2 实验仪器及耗材 | 第21-22页 |
| 1.1.1.3 主要实验试剂 | 第22-23页 |
| 1.1.1.4 主要试剂制备 | 第23页 |
| 1.1.2 实验方法 | 第23-31页 |
| 1.1.2.1 实验动物分组 | 第23页 |
| 1.1.2.2 大鼠尾静脉置管 | 第23-24页 |
| 1.1.2.3 行为学测定 | 第24-25页 |
| 1.1.2.4 大鼠腰断脊髓标本的采集 | 第25页 |
| 1.1.2.5 RT-qPCR检测瑞芬太尼痛觉过敏大鼠脊髓PICK1的mRNA水平变化 | 第25-27页 |
| 1.1.2.6 Western Blot检测瑞芬太尼痛觉过敏大鼠脊髓PICK1的蛋白水平变化 | 第27-30页 |
| 1.1.2.7 统计学分析 | 第30-31页 |
| 1.2 结果 | 第31-33页 |
| 1.2.1 瑞芬太尼输注后大鼠热刺激缩足潜伏期(PWL)和机械刺激缩足阈值(PWT)的变化 | 第31-32页 |
| 1.2.2 各组大鼠腰段脊髓mRNA及蛋白表达水平变化 | 第32-33页 |
| 1.3 讨论 | 第33-37页 |
| 1.3.1 瑞芬太尼的痛觉过敏现象 | 第33页 |
| 1.3.2 瑞芬太尼痛觉过敏的动物实验依据 | 第33-34页 |
| 1.3.3 瑞芬太尼痛觉过敏的研究现状 | 第34-35页 |
| 1.3.4 动物模型的建立 | 第35-36页 |
| 1.3.4.1 尾静脉置管 | 第35页 |
| 1.3.4.2 瑞芬太尼输注的剂量选择 | 第35页 |
| 1.3.4.3 研究中时间点的选择 | 第35页 |
| 1.3.4.4 行为学测定 | 第35-36页 |
| 1.3.5 PICK1 | 第36-37页 |
| 1.3.5.1 PICK1的分子结构 | 第36页 |
| 1.3.5.2 PICK1的分布及生物学功能 | 第36页 |
| 1.3.5.3 PICK1与RIH | 第36-37页 |
| 1.4 小结 | 第37-38页 |
| 二、瑞芬太尼痛觉过敏大鼠脊髓AMPA受体亚单位表达及运输水平的变化 | 第38-46页 |
| 2.1 对象和方法 | 第38-40页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第38页 |
| 2.1.1.1 实验动物 | 第38页 |
| 2.1.1.2 实验仪器及耗材 | 第38页 |
| 2.1.1.3 主要实验试剂 | 第38页 |
| 2.1.1.4 主要试剂制备 | 第38页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第38-40页 |
| 2.1.2.1 实验动物分组 | 第38页 |
| 2.1.2.2 大鼠尾静脉置管 | 第38-39页 |
| 2.1.2.3 行为学测定 | 第39页 |
| 2.1.2.4 大鼠腰断脊髓标本的采集 | 第39页 |
| 2.1.2.5 免疫荧光染色检测瑞芬太尼痛觉过敏大鼠脊髓AMPA受体Glu R1、GluR2、GluR3亚单位的表达 | 第39页 |
| 2.1.2.6 Western Blot检测瑞芬太尼痛觉过敏大鼠脊髓AMPA受体GluR1、GluR2、GluR3亚单位的运输变化 | 第39-40页 |
| 2.1.2.7 统计学分析 | 第40页 |
| 2.2 结果 | 第40-42页 |
| 2.2.1 瑞芬太尼输注后大鼠热刺激缩足潜伏期(PWL)和机械刺激缩足阈值(PWT)的变化 | 第40页 |
| 2.2.2 各组大鼠腰段脊髓AMPA受体Glu R1、GluR2、Glu R3亚单位在脊髓背角的表达情况 | 第40-42页 |
| 2.2.3 各组大鼠腰段脊髓AMPA受体Glu R1、GluR2、Glu R3亚单位在脊髓背角的运输情况 | 第42页 |
| 2.3 讨论 | 第42-45页 |
| 2.3.1 AMPA受体亚单位的表达及运输 | 第42-45页 |
| 2.4 小结 | 第45-46页 |
| 三、PICK1反义寡核苷酸对瑞芬太尼痛觉过敏大鼠脊髓AMPA受体表达及运输水平的变化的影响 | 第46-62页 |
| 3.1 对象和方法 | 第46-49页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第46页 |
| 3.1.1.1 实验动物 | 第46页 |
| 3.1.1.2 实验仪器及耗材 | 第46页 |
| 3.1.1.3 主要实验试剂 | 第46页 |
| 3.1.1.4 主要试剂制备 | 第46页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第46-49页 |
| 3.1.2.1 实验动物分组及实验流程 | 第46-47页 |
| 3.1.2.2 大鼠鞘内置管 | 第47-48页 |
| 3.1.2.3 运动功能测试 | 第48页 |
| 3.1.2.4 大鼠尾静脉置管 | 第48页 |
| 3.1.2.5 行为学测定 | 第48页 |
| 3.1.2.6 大鼠腰断脊髓标本的采集 | 第48页 |
| 3.1.2.7 Western Blot检测Part A大鼠脊髓PICK1的蛋白水平变化 | 第48页 |
| 3.1.2.8 免疫荧光染色检测Part B大鼠脊髓AMPA受体Glu R1、GluR2、GluR3亚单位的表达 | 第48-49页 |
| 3.1.2.9 Western Blot检测Part B大鼠脊髓AMPA受体GluR1、GluR2、GluR3亚单位的运输变化 | 第49页 |
| 3.1.2.10统计学分析 | 第49页 |
| 3.2 结果 | 第49-56页 |
| 3.2.1 大鼠鞘内置管后运动功能测试结果 | 第49页 |
| 3.2.2 大鼠鞘内置管注入 2%利多卡因结果 | 第49页 |
| 3.2.3 大鼠鞘内置管给药后PICK1蛋白的表达 | 第49-51页 |
| 3.2.4 瑞芬太尼输注后大鼠热刺激缩足潜伏期(PWL)和机械刺激缩足阈值(PWT)的变化 | 第51-52页 |
| 3.2.5 各组大鼠腰段脊髓AMPA受体Glu R1、GluR2、Glu R3亚单位在脊髓背角的表达情况 | 第52-54页 |
| 3.2.6 各组大鼠腰段脊髓AMPA受体Glu R1、GluR2、Glu R3亚单位在脊髓背角的运输情况 | 第54-56页 |
| 3.3 讨论 | 第56-61页 |
| 3.3.1 反义寡核苷酸技术 | 第56-57页 |
| 3.3.2 鞘内置管技术 | 第57页 |
| 3.3.3 PICK1反义寡核苷酸对于PICK1蛋白表达水平的影响 | 第57-58页 |
| 3.3.4 PICK1反义寡核苷酸对于瑞芬太尼痛觉过敏大鼠的行为学的影响 | 第58页 |
| 3.3.5 PICK1反义寡核苷酸对于瑞芬太尼痛觉过敏大鼠的脊髓AMPA受体的表达和运输的影响 | 第58-59页 |
| 3.3.6 PICK1与AMPA受体亚单位的表达及运输的研究现状 | 第59-61页 |
| 3.4 小结 | 第61-62页 |
| 结论 | 第62页 |
| 论文创新点 | 第62-63页 |
| 不足之处 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-74页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第74-76页 |
| 综述 α-氨基-3 羟基5甲基4异恶唑丙酸受体在瑞芬太尼痛觉过敏中的作用的研究进展 | 第76-85页 |
| 综述参考文献 | 第82-85页 |
| 致谢 | 第85-86页 |
| 个人简历 | 第86页 |
