| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩略语/符号说明 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-15页 |
| 研究现状、成果 | 第12-13页 |
| 研究目的、方法 | 第13-15页 |
| 一、hUMSCs对高糖环境中RF/6A细胞生物学影响 | 第15-31页 |
| 1.1 对象和方法 | 第15-21页 |
| 1.1.1 实验细胞 | 第15页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第15页 |
| 1.1.3 主要仪器材料 | 第15-16页 |
| 1.1.4 主要溶液的配置 | 第16-17页 |
| 1.1.5 实验方法 | 第17-21页 |
| 1.2 结果 | 第21-26页 |
| 1.2.1 RF/6A细胞和hUCMSCs的形态 | 第21-22页 |
| 1.2.2 hUCMSCs与高糖RF/6A共培养模型的建立 | 第22页 |
| 1.2.3 MTT法检测共培养后RF/6A细胞活力 | 第22-23页 |
| 1.2.4 细胞划痕修复实验结果 | 第23-24页 |
| 1.2.5 细胞黏附能力的测定 | 第24-25页 |
| 1.2.6 细胞管腔形成能力的测定 | 第25-26页 |
| 1.3 讨论 | 第26-29页 |
| 1.3.1 高糖对猴视网膜血管内皮细胞细胞生长的影响 | 第26-27页 |
| 1.3.2 MSCs对高糖环境中RF/6A细胞的影响 | 第27-28页 |
| 1.3.3 MSCs干预早期DR的实验研究 | 第28页 |
| 1.3.4 hUCMSCs干预早期DR的可能机制 | 第28-29页 |
| 1.4 小结 | 第29-31页 |
| 二、hUCMSCs对高糖环境中RF/6A细胞因子影响 | 第31-42页 |
| 2.1 对象和方法 | 第31-34页 |
| 2.1.1 实验细胞 | 第31页 |
| 2.1.2 主要试剂及器械 | 第31页 |
| 2.1.3 其他试剂及器械 | 第31页 |
| 2.1.4 实验方法 | 第31-34页 |
| 2.2 结果 | 第34-36页 |
| 2.2.1 Western blot检测各实验组Foxp3的表达量 | 第34-35页 |
| 2.2.2 酶联免疫吸附法测定三组各自收集的培养上清液中IL-1β、IL-17、ICAM-1 的浓度 | 第35-36页 |
| 2.3 讨论 | 第36-41页 |
| 2.3.1 IL-1β 与DR的研究 | 第36-37页 |
| 2.3.2 ICAM-1 与DR的研究 | 第37-38页 |
| 2.3.3 Treg/Th17失衡与DR可能机制的研究 | 第38-41页 |
| 2.4 小结 | 第41-42页 |
| 结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-53页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第53-54页 |
| 综述 间充质干细胞治疗早期糖尿病视网膜病变的研究进展 | 第54-64页 |
| 综述参考文献 | 第58-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 个人简历 | 第65页 |
