| 致谢 | 第4-5页 |
| 在读博士学位期间的主要业绩 | 第5-13页 |
| 中文摘要 | 第13-15页 |
| 英文摘要 | 第15页 |
| 第一章 文献综述 | 第18-42页 |
| 1 高等植物铝毒及其耐铝机制的研究现状 | 第18-27页 |
| 1．1 Al毒形式 | 第18页 |
| 1．2 根尖是Al毒作用靶 | 第18-19页 |
| 1．3 植物Al毒的两大指标 | 第19-20页 |
| 1．4 植物铝毒机制的研究 | 第20-23页 |
| 1．4．1 铝毒对果胶甲基酯酶PME活性的影响 | 第20页 |
| 1．4．2 Al毒对细胞营养物质吸收抑制的机理 | 第20-21页 |
| 1．4．3 Al毒对细胞分裂抑制的机理 | 第21页 |
| 1．4．4 Al毒对细胞伸长抑制的机理 | 第21-23页 |
| 1．4．5 Al毒诱导细胞死亡的机理 | 第23页 |
| 1．5 植物耐铝机制的研究 | 第23-25页 |
| 1．5．1 有机酸分泌机制 | 第23-24页 |
| 1．5．2 其他耐铝机制 | 第24-25页 |
| 1．5．3 铝毒诱导基因的克隆 | 第25页 |
| 1．6 展望 | 第25-27页 |
| 2 环境胁迫诱导的植物细胞程序性死亡 | 第27-34页 |
| 2．1 高等植物细胞死亡及PCD的形态特征 | 第27-28页 |
| 2．2 环境胁迫因子的类型及其诱导特点 | 第28页 |
| 2．2．1 环境胁迫因子的类型 | 第28页 |
| 2．2．2 环境胁迫诱导PCD的特点 | 第28页 |
| 2．3 环境胁迫诱导的植物PCD信号传导途径 | 第28-32页 |
| 2．3．1 环境胁迫诱导PCD的重要信号分子 | 第28-30页 |
| 2．3．2 植物PCD调控基因 | 第30-31页 |
| 2．3．3 植物PCD的可能信号传导途径 | 第31-32页 |
| 2．4 在作物抗逆基因工程中的应用 | 第32-33页 |
| 2．5 高等植物PCD的进化及其生物学意义 | 第33-34页 |
| 2．6 展望 | 第34页 |
| 3 高等植物根边缘细胞的发育调控及其生物学功能 | 第34-42页 |
| 3．1 边缘细胞的一些生物学特性 | 第35-37页 |
| 3．1．1 不同物种边缘细胞的数量、大小、活性及其遗传潜力 | 第35页 |
| 3．1．2 边缘细胞的粘液层及其成分 | 第35-37页 |
| 3．2 边缘细胞的发育及其调控 | 第37-39页 |
| 3．2．1 边缘细胞的发育 | 第37-38页 |
| 3．2．2 边缘细胞发育的分子调控 | 第38-39页 |
| 3．3 边缘细胞的生物学功能 | 第39-41页 |
| 3．3．1 生物胁迫因子 | 第39-40页 |
| 3．3．2 化学胁迫因子 | 第40-41页 |
| 3．3．3 物理胁迫因子 | 第41页 |
| 3．4 展望 | 第41-42页 |
| 第二章 超微弱发光分析技术在大麦铝毒及其耐铝性鉴定中的应用 | 第42-58页 |
| 1 前言 | 第42-44页 |
| 2 材料与方法 | 第44-46页 |
| 2．1 材料 | 第44页 |
| 2．2 种子萌发及其培养 | 第44-45页 |
| 2．3 铝处理 | 第45页 |
| 2．4 根相对伸长率的测定 | 第45页 |
| 2．5 大麦根尖超微弱发光的测定 | 第45-46页 |
| 2．6 数据分析 | 第46页 |
| 3 结果与分析 | 第46-53页 |
| 3．1 30份大麦品种的耐铝性鉴定 | 第46-49页 |
| 3．2 不同耐铝性大麦品种的根尖超微弱发光的测定 | 第49-52页 |
| 3．3 根相对生长率与根尖相对发光率的相关性分析 | 第52页 |
| 3．4 不同铝浓度处理对大麦根尖超微弱发光的影响 | 第52-53页 |
| 3．5 不同处理时间对大麦根尖超微弱发光的影响 | 第53页 |
| 4 讨论 | 第53-57页 |
| 5 结论 | 第57-58页 |
| 第三章 铝毒诱导大麦根尖细胞姐妹染色单体交换的研究 | 第58-71页 |
| 1 前言 | 第58-61页 |
| 2 材料与方法 | 第61-63页 |
| 2．1 材料 | 第61页 |
| 2．2 种子萌发及其BrdU处理 | 第61-62页 |
| 2．3 染色体标本的制备及SCE的检测 | 第62页 |
| 2．3．1 酶解 | 第62页 |
| 2．3．2 低渗 | 第62页 |
| 2．3．3 滴片 | 第62页 |
| 2．3．4 紫外线处理 | 第62页 |
| 2．3．5 Giemsa染色 | 第62页 |
| 2．3．6 镜检及SCE计数 | 第62页 |
| 2．4 数据分析 | 第62-63页 |
| 3 结果与分析 | 第63-66页 |
| 3．1 铝毒对不同耐铝性大麦品种SCE率的影响 | 第63页 |
| 3．2 不同铝浓度对大麦根尖细胞SCE率的影响 | 第63-64页 |
| 3．3 不同处理时间对大麦根尖细胞SCE率的影响 | 第64-65页 |
| 3．4 抗坏血酸（Vc）对铝诱导大麦根尖细胞SCE的影响 | 第65-66页 |
| 4 讨论 | 第66-69页 |
| 5 结论 | 第69-71页 |
| 第四章 大麦根尖PME及其在铝毒敏感性中的作用 | 第71-80页 |
| 1 前言 | 第71-72页 |
| 2 材料与方法 | 第72-73页 |
| 2．1 材料 | 第72页 |
| 2．2 种子萌发及其培养 | 第72页 |
| 2．3 铝处理及其根伸长率的测定 | 第72页 |
| 2．4 根尖细胞壁铝积累的荧光检测 | 第72-73页 |
| 2．5 根尖果胶甲基酯酶PME的提取 | 第73页 |
| 2．6 PME活性测定 | 第73页 |
| 3 结果与分析 | 第73-75页 |
| 3．1 铝毒对不同耐铝性大麦根伸长的抑制 | 第73-74页 |
| 3．2 铝在不同耐铝性大麦根尖细胞壁的积累 | 第74页 |
| 3．3 铝毒对大麦根尖细胞果胶甲基酯酶PME表达的影响 | 第74-75页 |
| 4 讨论 | 第75-77页 |
| 5 结论 | 第77-80页 |
| 第五章 铝毒诱导大麦细胞死亡的研究 | 第80-92页 |
| 1 前言 | 第80-81页 |
| 2 材料与方法 | 第81-83页 |
| 2．1 材料 | 第81页 |
| 2．2 种子萌发及铝处理 | 第81页 |
| 2．3 根尖DNA提取与电泳 | 第81页 |
| 2．4 根尖细胞活性的检测及凋亡小体的观察 | 第81-82页 |
| 2．5 根尖石蜡切片的制作 | 第82页 |
| 2．6 根尖超微弱发光检测 | 第82页 |
| 2．7 大麦悬浮细胞系的建立 | 第82页 |
| 2．8 大麦悬浮细胞的铝处理 | 第82页 |
| 2．9 悬浮细胞净生长率的测定 | 第82页 |
| 2．10 悬浮细胞活性测定 | 第82-83页 |
| 2．11 悬浮细胞有丝分裂指数的测定 | 第83页 |
| 2．12 悬浮细胞DNA的提取与电泳分析 | 第83页 |
| 2．13 数据统计及分析 | 第83页 |
| 3 结果 | 第83-87页 |
| 3．1 铝毒诱导大麦根尖细胞死亡的研究 | 第83-85页 |
| 3．1．1 铝毒对根净生长及根尖活性的影响 | 第83-84页 |
| 3．1．2 铝毒对核DNA的影响及凋亡小体的观察 | 第84-85页 |
| 3．1．3 铝毒对根尖细胞超微弱发光的影响 | 第85页 |
| 3．2 铝毒诱导大麦悬浮细胞死亡的研究 | 第85-87页 |
| 3．2．1 铝毒对悬浮细胞生长的影响 | 第85-86页 |
| 3．2．2 铝毒对悬浮细胞死亡率的影响 | 第86页 |
| 3．2．3 铝毒对细胞分裂的影响 | 第86-87页 |
| 3．2．4 铝毒对悬浮细胞DNA的影响 | 第87页 |
| 4 讨论 | 第87-90页 |
| 5 结论 | 第90-92页 |
| 第六章 凋亡抑制基因在植物耐铝基因工程中的应用 | 第92-102页 |
| 1 前言 | 第92页 |
| 2 材料与方法 | 第92-96页 |
| 2．1 表达载体的构建 | 第92-94页 |
| 2．1．1 质粒与菌株 | 第93页 |
| 2．1．2 酶及相关试剂 | 第93页 |
| 2．1．3 基本操作步骤 | 第93-94页 |
| 2．2 农杆菌介导的转化 | 第94页 |
| 2．2．1 相关材料与试剂 | 第94页 |
| 2．2．2 基本操作步骤 | 第94页 |
| 2．3 转基因植株的检测 | 第94-96页 |
| 2．3．1 全基因组的提取 | 第94-95页 |
| 2．3．2 PCR检测 | 第95页 |
| 2．3．3 Southern杂交 | 第95-96页 |
| 3 结果与分析 | 第96-100页 |
| 3．1 ced-9表达载体的构建 | 第96-98页 |
| 3．2 农杆菌介导的ced-9转化烟草 | 第98-99页 |
| 3．3 再生植株的分子检测 | 第99-100页 |
| 4 讨论 | 第100-101页 |
| 5 结论 | 第101-102页 |
| 第七章 大麦根边缘细胞发育及其在铝毒中的作用 | 第102-122页 |
| 1 前言 | 第102-103页 |
| 2 材料与方法 | 第103-105页 |
| 2．1 材料 | 第103页 |
| 2．2 种子萌发及其培养 | 第103-104页 |
| 2．3 边缘细胞收集、数目统计及移去 | 第104页 |
| 2．4 边缘细胞的活性检测 | 第104页 |
| 2．5 果胶甲基酯酶PME的提取及其活性检测 | 第104-105页 |
| 2．6 温度对BC发育的影响 | 第105页 |
| 2．7 大麦边缘细胞和幼苗铝处理 | 第105页 |
| 2．8 大麦根尖有丝分裂指数的测定 | 第105页 |
| 2．9 数据分析 | 第105页 |
| 3 结果与分析 | 第105-115页 |
| 3．1 大麦根边缘细胞的发育研究 | 第105-112页 |
| 3．1．1 离体收集的大麦边缘细胞活性检测 | 第105-106页 |
| 3．1．2 不同培养方式对大麦根边缘细胞发育的影响 | 第106-109页 |
| 3．1．3 温度对大麦根伸长和边缘细胞发育的影响 | 第109-111页 |
| 3．1．4 根冠果胶甲基酯酶（PME）活性与边缘细胞发育的相关性 | 第111-112页 |
| 3．2 铝毒对大麦根边缘细胞发育的影响 | 第112-114页 |
| 3．3 边缘细胞在大麦铝毒中的功能 | 第114-115页 |
| 4 讨论 | 第115-120页 |
| 5 结论 | 第120-122页 |
| 参考文献 | 第122-137页 |
