| 摘要 | 第8-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 1 前言 | 第11-17页 |
| 1.1 玉米赤霉烯酮研究进展 | 第11-13页 |
| 1.1.1 理化性质 | 第11页 |
| 1.1.2 吸收代谢 | 第11页 |
| 1.1.3 作用形式 | 第11页 |
| 1.1.4 毒性及毒性机制 | 第11-13页 |
| 1.2 原花青素的研究进展 | 第13-14页 |
| 1.2.1 理化性质 | 第13页 |
| 1.2.2 吸收代谢 | 第13页 |
| 1.2.3 生物活性 | 第13-14页 |
| 1.2.4 毒理学研究 | 第14页 |
| 1.3 Nrf2-Keap1/ARE信号通路 | 第14-15页 |
| 1.4 试验目的和意义 | 第15-17页 |
| 2 材料与方法 | 第17-29页 |
| 2.1 试验材料 | 第17-19页 |
| 2.1.1 主要仪器 | 第17-18页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第18-19页 |
| 2.2 试验方法 | 第19-29页 |
| 2.2.1 玉米赤霉烯酮染毒和原花青素解毒模型的建立 | 第19-20页 |
| 2.2.2 支持细胞活性的检测 | 第20页 |
| 2.2.3 支持细胞凋亡率的检测 | 第20-21页 |
| 2.2.4 支持细胞氧化损伤的检测 | 第21-22页 |
| 2.2.5 TM4细胞中Nrf2、GSH-PX、HO-1、γ-GCS及NQO1基因mRNA的表达水平检测 | 第22-24页 |
| 2.2.6 TM4细胞的Nrf2、GSH-Px、HO-1、γ-GCS、NQO1蛋白表达水平的检测 | 第24-28页 |
| 2.2.7 数据统计与分析 | 第28-29页 |
| 3 结果与分析 | 第29-46页 |
| 3.1 试验模型建立结果 | 第29-32页 |
| 3.1.1 玉米赤霉烯酮对支持细胞相对存活率的检测结果 | 第29-30页 |
| 3.1.2 原花青素对支持细胞相对存活率的检测结果 | 第30页 |
| 3.1.3 玉米赤霉烯酮与原花青素对TM4细胞相对存活率的检测结果 | 第30-32页 |
| 3.2 支持细胞活性检测结果 | 第32-33页 |
| 3.3 支持细胞凋亡的检测结果 | 第33-35页 |
| 3.4 支持细胞抗氧化功能的检测结果 | 第35-39页 |
| 3.4.1 支持细胞T-SOD活性检测结果 | 第35-36页 |
| 3.4.2 支持细胞MDA含量检测结果 | 第36-37页 |
| 3.4.3 支持细胞GSH含量检测结果 | 第37-38页 |
| 3.4.5 支持细胞GSH-Px含量检测结果 | 第38-39页 |
| 3.5 支持细胞Nrf2、HO-1、GSH-Px、γ-GCS、NQO1mRNA和蛋白表达检测结果 | 第39-46页 |
| 3.5.1 支持细胞Nrf2的mRNA和蛋白表达水平 | 第40-41页 |
| 3.5.2 支持细胞NQO1的mRNA和蛋白表达水平 | 第41-42页 |
| 3.5.3 支持细胞HO-1的mRNA和蛋白表达水平 | 第42-43页 |
| 3.5.4 支持细胞GSH-Px的mRNA和蛋白表达水平 | 第43-44页 |
| 3.5.5 支持细胞γ-GCS的mRNA和蛋白表达水平 | 第44-46页 |
| 4 讨论 | 第46-51页 |
| 4.1 原花青素对玉米赤霉烯酮诱导的支持细胞活性和凋亡率的影响 | 第46-48页 |
| 4.2 原花青素对玉米赤霉烯酮诱导的支持细胞抗氧化及相关因子的影响 | 第48-51页 |
| 5 结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-59页 |
| 附录 | 第59-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 攻读学位期间发表的文章 | 第65页 |
