| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 一、文献综述 | 第14-28页 |
| 1 前言 | 第14-15页 |
| 2 骨骼肌重塑与SC概述 | 第15-17页 |
| 3 运动、SC、MRFs与骨骼肌重塑 | 第17-19页 |
| 4 Wnt信号通路概述 | 第19-21页 |
| 4.1 Wnt配体的分泌及其受体 | 第19-20页 |
| 4.2 经典Wnt信号通路 | 第20-21页 |
| 4.3 非经典Wnt信号通路 | 第21页 |
| 5 Wnt信号通路与SC | 第21-23页 |
| 5.1 Wnt信号通路与SC自我更新 | 第21-22页 |
| 5.2 Wnt信号通路与SC分化 | 第22-23页 |
| 6 运动、Wnt信号通路与骨骼肌重塑 | 第23-25页 |
| 6.1 经典Wnt信号通路与骨骼肌重塑 | 第23-24页 |
| 6.2 运动、经典Wnt信号通路与骨骼肌重塑 | 第24-25页 |
| 7 早老素、Wnt信号通路 | 第25-28页 |
| 二、实验研究 | 第28-55页 |
| 第一部分 运动对PS1/PS2双基因敲除小鼠骨骼肌Wnt/β-catenin信号通路的影响 | 第28-49页 |
| 1 前言 | 第28页 |
| 2 材料和方法 | 第28-37页 |
| 2.1 实验动物及分组 | 第28-29页 |
| 2.2 实验动物及训练方案 | 第29页 |
| 2.3 样本采集与处理 | 第29-30页 |
| 2.4 主要试剂和仪器 | 第30-31页 |
| 2.4.1 主要试剂 | 第30-31页 |
| 2.4.2 主要仪器 | 第31页 |
| 2.5 指标检测 | 第31-36页 |
| 2.5.1 Real-time PCR检测各目的基因mRNA相对水平 | 第31-34页 |
| 2.5.2 Western Blotting测定小鼠股四头肌Wnt通路相关蛋白含量 | 第34-36页 |
| 2.6 统计方法 | 第36-37页 |
| 3 实验结果 | 第37-41页 |
| 3.1 实验后各组小鼠股四头肌湿肌重 | 第37页 |
| 3.2 Real-time PCR检测结果 | 第37-40页 |
| 3.2.1 各组小鼠骨骼肌Wnt3a、Lrp6、Axin2、GSK3β、β-catenin mRNA相对含量 | 第37-39页 |
| 3.2.2 各组小鼠骨骼肌Pax7、Myf5、Myogenin、MyoD转录水平 | 第39-40页 |
| 3.3 WESTERN-BLOTTING检测结果 | 第40-41页 |
| 3.3.1 各组小鼠骨骼肌β-catenin蛋白含量及其磷酸化水平 | 第40-41页 |
| 3.3.2 各组小鼠骨骼肌MyoD蛋白水平 | 第41页 |
| 4 分析与讨论 | 第41-48页 |
| 4.1 运动对小鼠骨骼肌Wnt3a/Lrp6/Axin2/Gsk3β转录水平的影响 | 第41-43页 |
| 4.2 运动对PS敲除小鼠骨骼肌p-catenin表达及其磷酸化水平影响 | 第43-44页 |
| 4.3 运动对小鼠骨骼肌Pax7、Myf5、myogenin、MyoD表达水平的影响 | 第44-47页 |
| 4.4 Wnt/β-catenin信号通路对SC分化的调控 | 第47-48页 |
| 5 小结 | 第48-49页 |
| 第二部分 运动对小鼠骨骼肌IGF-1、Myostatin的影响 | 第49-55页 |
| 6 前言 | 第49页 |
| 7 材料与方法 | 第49-51页 |
| 7.1 实验动物与分组 | 第49页 |
| 7.2 主要试剂及仪器 | 第49-50页 |
| 7.3 数理统计方法 | 第50页 |
| 7.4 指标检测结果 | 第50-51页 |
| 7.4.1 Real-time PCR检测结果 | 第50-51页 |
| 7.4.2 Western-Blotting检测结果 | 第51页 |
| 8 分析与讨论 | 第51-54页 |
| 8.1 耐力、抗阻运动对小鼠股四头肌IGF-1的影响 | 第51-52页 |
| 8.2 耐力、抗阻运动对小鼠股四头肌myostatin的影响 | 第52-53页 |
| 8.3 运动后IGF-1、Myostatin表达变化对小鼠骨骼肌MyoD及SC分化的影响 | 第53-54页 |
| 9 小结 | 第54-55页 |
| 三、研究总结 | 第55-56页 |
| 1、主要研究结论 | 第55页 |
| 2、研究缺陷与不足 | 第55-56页 |
| 缩略词 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-71页 |
| 后记 | 第71页 |
