| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 中英文缩略词表 | 第11-15页 |
| 前言 | 第15-18页 |
| 实验一：补青颗粒对紫外线诱导的大鼠晶状体内氧化应激平衡状态的影响及保护作用的实验研究 | 第18-34页 |
| 材料与方法 | 第18-23页 |
| 1.实验材料与仪器 | 第18-19页 |
| 1.1 实验动物 | 第18页 |
| 1.2 主要实验试剂 | 第18页 |
| 1.3 主要实验仪器 | 第18页 |
| 1.4 主要试剂配制 | 第18-19页 |
| 2.实验步骤与方法 | 第19-20页 |
| 2.1 实验动物分组 | 第19页 |
| 2.2 紫外线照射复制大鼠白内障模型 | 第19页 |
| 2.3 药物干预 | 第19-20页 |
| 3.实验观察与指标检测 | 第20-21页 |
| 3.1 观察大鼠的一般情况 | 第20页 |
| 3.2 观察大鼠晶状体混浊情况 | 第20页 |
| 3.3 晶状体剥离 | 第20-21页 |
| 3.4 提取含药血清 | 第21页 |
| 4.病理学观察、血清检测 | 第21-22页 |
| 4.1 石蜡切片HE染色 | 第21-22页 |
| 4.2 ELISA法测血清中SOD、GSH-PX活性以及MDA含量 | 第22页 |
| 5.统计方法 | 第22-23页 |
| 结果 | 第23-29页 |
| 1.大鼠一般情况 | 第23页 |
| 2.大鼠晶状体混浊程度 | 第23-27页 |
| 2.1 紫外线造模期间 | 第23-24页 |
| 2.2 药物干预阶段 | 第24-27页 |
| 3.HE染色 | 第27页 |
| 4.ELISA法测血清中SOD、GSH-PX和MDA含量变化 | 第27-29页 |
| 讨论 | 第29-33页 |
| 1.紫外线照射复制SD大鼠氧化应激白内障模型 | 第29-30页 |
| 2.晶状体中的氧化和抗氧化还原系统 | 第30-31页 |
| 3.补青颗粒的药理作用、机制研究 | 第31-33页 |
| 结论 | 第33-34页 |
| 实验二 补青颗粒对大鼠紫外线所致晶状体VEGF-VEGFR2-SRC信号通路表达的影响 | 第34-49页 |
| 材料与方法 | 第34-40页 |
| 1.实验材料与仪器 | 第34-35页 |
| 1.1 实验动物 | 第34页 |
| 1.2 主要实验试剂 | 第34页 |
| 1.3 主要实验仪器 | 第34页 |
| 1.4 主要试剂配制 | 第34-35页 |
| 2.实验步骤与方法 | 第35页 |
| 2.1 实验动物分组 | 第35页 |
| 2.2 紫外线照射复制SD大鼠氧化应激模型 | 第35页 |
| 2.3 药物干预（大鼠灌胃用药的剂量根据人与大鼠等效剂量换算公式计算，灌胃体积按照 100g大鼠灌胃 1mL计算） | 第35页 |
| 3.大鼠晶状体的分离与分组 | 第35-36页 |
| 3.1 大鼠晶状体的分离 | 第35页 |
| 3.2 大鼠晶状体的分组 | 第35-36页 |
| 4.实验检测方法 | 第36-39页 |
| 4.1 Real Time-PCR法检测晶状体中VEGF、VEGF-R2、SRC mRNA表达 | 第36-37页 |
| 4.2 免疫组化染色 | 第37页 |
| 4.3 Western Blot检测VEGF、VEGF-R2、SRC和P-SRC的表达水平 | 第37-39页 |
| 5.统计分析 | 第39-40页 |
| 结果 | 第40-45页 |
| 1.Real Time-PCR法检测晶状体中VEGF、VEGF-R2、SRC mRNA表达 | 第40-41页 |
| 2.免疫组化 | 第41-43页 |
| 3.Western Blot法检测大鼠晶状体中VEGF、VEGF-R2、SRC和P-SRC的表达 | 第43-45页 |
| 讨论 | 第45-48页 |
| 1.白内障的历史渊源 | 第45页 |
| 2.祖国医学与白内障 | 第45-46页 |
| 3.VEGF-VEGFR2-SRC通路与白内障 | 第46-48页 |
| 结论 | 第48-49页 |
| 思考与展望 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-56页 |
| 综述 年龄相关性白内障的中医研究和治疗进展 | 第56-64页 |
| 参考文献 | 第62-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第65-66页 |
| 个人简历 | 第66页 |
