| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 文献综述 | 第12-24页 |
| 第一章 羊口疮免疫应答机制及研究进展 | 第12-18页 |
| 1.1 前言 | 第12页 |
| 1.2 羊口疮感染特性 | 第12-13页 |
| 1.3 羊口疮宿主免疫应答 | 第13-15页 |
| 1.3.1 细胞免疫 | 第13-14页 |
| 1.3.2 体液免疫 | 第14-15页 |
| 1.4 羊口疮病毒免疫逃逸 | 第15-18页 |
| 1.4.1 IL-10 | 第16页 |
| 1.4.2 VEGF | 第16页 |
| 1.4.3 dUTPase | 第16页 |
| 1.4.4 ANK及CBP | 第16-18页 |
| 第二章 IL-17和Th17在炎症中的作用 | 第18-24页 |
| 2.1 前言 | 第18页 |
| 2.2 IL-17在炎症中的作用以及调节机制 | 第18-22页 |
| 2.2.1 IL-17A和IL-17F的细胞来源 | 第18-20页 |
| 2.2.2 IL-17在炎症的免疫应答和宿主防御病原中的作用 | 第20-22页 |
| 2.2.3 IL-17A和IL-17F的不同作用 | 第22页 |
| 2.3 Th17细胞在炎症中的作用及免疫调控的分子基础 | 第22-24页 |
| 2.3.1 Th17细胞在炎症中的作用 | 第22-23页 |
| 2.3.2 Th17细胞分化的调节 | 第23-24页 |
| 试验研究 | 第24-51页 |
| 第三章 羊口疮病程中损伤处炎性细胞的观察 | 第24-31页 |
| 3.1 材料 | 第24页 |
| 3.1.1 动物 | 第24页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第24页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第24页 |
| 3.2 方法 | 第24-26页 |
| 3.2.1 病料采集 | 第24页 |
| 3.2.2 制作石蜡切片 | 第24-26页 |
| 3.3 结果 | 第26-29页 |
| 3.3.1 健康皮肤对照 | 第26页 |
| 3.3.2 羊口疮病变组织观察 | 第26-29页 |
| 3.4 讨论 | 第29-30页 |
| 3.5 小结 | 第30-31页 |
| 第四章 羊口疮病毒对山羊PBMCs产生细胞因子的影响 | 第31-42页 |
| 4.1 材料 | 第31页 |
| 4.1.1 病毒 | 第31页 |
| 4.1.2 动物 | 第31页 |
| 4.1.3 主要试剂 | 第31页 |
| 4.1.4 仪器设备 | 第31页 |
| 4.2 方法 | 第31-34页 |
| 4.2.1 ORFV病毒滴度测定 | 第31-32页 |
| 4.2.2 PBMCs悬液的制备 | 第32页 |
| 4.2.3 PBMCs 增殖试验 | 第32页 |
| 4.2.4 ORFV刺激PBMCs产生细胞因子mRNA检测 | 第32-33页 |
| 4.2.5 ORF发病羔羊PBMCs产生细胞因子mRNA检测 | 第33-34页 |
| 4.2.6 统计分析 | 第34页 |
| 4.3 结果 | 第34-40页 |
| 4.3.1 ORFV病毒滴度测定结果 | 第34-35页 |
| 4.3.2 ORFV刺激山羊PBMCs产生细胞因子mRNA测定结果 | 第35-38页 |
| 4.3.3 ORF发病羔羊PBMCs产生细胞因子mRNA测定结果 | 第38-40页 |
| 4.4 讨论 | 第40-41页 |
| 4.5 小结 | 第41-42页 |
| 第五章 山羊IL-1β 和IL-6 表达及多克隆抗体的制备 | 第42-51页 |
| 5.1 材料 | 第42页 |
| 5.1.1 载体及菌种 | 第42页 |
| 5.1.2 主要试剂 | 第42页 |
| 5.2 方法 | 第42-45页 |
| 5.2.1 引物设计及PCR扩增条件 | 第42-43页 |
| 5.2.2 构建表达载体 | 第43-44页 |
| 5.2.3 重组质粒的诱导表达 | 第44页 |
| 5.2.4 山羊IL-1β 和IL-6 蛋白纯化与浓缩 | 第44页 |
| 5.2.5 抗山羊IL-1β 和IL-6 多克隆抗体的制备 | 第44-45页 |
| 5.3 结果 | 第45-49页 |
| 5.3.1 山羊IL-1β 和IL-6 基因克隆 | 第45-49页 |
| 5.4 讨论 | 第49-50页 |
| 5.5 小结 | 第50-51页 |
| 结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 作者简介 | 第58页 |
