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桑叶多糖MLP对糖尿病大鼠胰岛β细胞氧化应激损伤的保护作用及其机制研究

中文摘要第12-14页
Abstract第14-16页
前言第17-41页
    1.1 糖尿病的危害第17-18页
    1.2 2型糖尿病的发病机制第18-21页
        1.2.1 遗传因素第18-19页
            1.2.1.1 HLA基因第18-19页
            1.2.1.2 UCPs基因第19页
            1.2.1.3 IRS-1 基因第19页
        1.2.2 环境因素第19-21页
            1.2.2.1 饮食第20页
            1.2.2.2 肥胖第20-21页
            1.2.2.3 运动第21页
    1.3 氧化应激与糖尿病第21-31页
        1.3.1 氧化应激标志物的种类及其检测方法第22-24页
        1.3.2 氧化应激对胰岛 β 细胞功能的影响第24-31页
            1.3.2.1 ROS直接引起 β 细胞损伤第25页
            1.3.2.2 氧化应激通过核转录因子(nuclear transcription factor-κB, NF-κB)通路引起 β 细胞损伤第25-26页
            1.3.2.3 氧化应激影响 β 细胞胰岛素的合成和分泌第26-28页
            1.3.2.4 氧化应激与胰岛素抵抗第28-31页
    1.4 糖尿病的防治第31-39页
    1.5 本研究的目的和意义第39-41页
2 材料与方法第41-60页
    2.1 材料第41-44页
        2.1.1 桑叶多糖MLP第41页
        2.1.2 试验动物与饲料第41页
        2.1.3 细胞第41页
        2.1.4 试剂第41-42页
        2.1.5 引物第42页
        2.1.6 相关溶液及配制第42-44页
        2.1.7 仪器第44页
    2.2 方法第44-60页
        2.2.1 2 型糖尿病大鼠机体组织氧化应激水平的测定第44-48页
            2.2.1.1 2 型糖尿病动物模型的制备第44-45页
            2.2.1.2 实验设计与分组第45页
            2.2.1.3 大鼠血液样品的采集第45页
            2.2.1.4 大鼠胰腺组织样品的采集第45页
            2.2.1.5 大鼠肝脏组织样品的采集第45-46页
            2.2.1.6 大鼠肌肉组织的采集第46页
            2.2.1.7 大鼠血液相关指标的检测第46页
            2.2.1.8 大鼠胰腺组织相关指标的检测第46页
            2.2.1.9 大鼠肝脏组织相关指标的检测第46页
            2.2.1.9 大鼠肌肉组织相关指标的检测第46-47页
            2.2.1.10大鼠胰腺组织HE染色及形态观察第47页
            2.2.1.11大鼠肝脏组织HE染色及形态观察第47页
            2.2.1.12大鼠肌肉组织HE染色及形态观察第47页
            2.2.1.13大鼠肌肉组织葡萄糖转运子 4(GLUT4)的转位观察第47-48页
        2.2.2 INS-1 细胞培养第48-49页
            2.2.2.1 INS-1 细胞复苏第48页
            2.2.2.2 INS-1 细胞传代第48页
            2.2.2.3 细胞冻存第48-49页
        2.2.3 含药血清对INS-1 细胞功能的影响第49-50页
            2.2.3.1 含药血清的制备第49页
            2.2.3.2 含药血清对INS-1 细胞毒性研究第49页
            2.2.3.3 含药血清对高糖培养INS-1 细胞活力的影响第49页
            2.2.3.4 含药血清对高糖培养INS-1 细胞葡萄糖刺激的胰岛素分泌能力的影响第49-50页
        2.2.4 含药血清对高糖培养INS-1 细胞氧化应激的影响第50-51页
            2.2.4.1 含药血清对高糖培养INS-1 细胞ROS含量的影响第50页
            2.2.4.2 含药血清对高糖培养INS-1 细胞中MDA含量的影响第50页
            2.2.4.3 含药血清对高糖培养INS-1 细胞中 8-OHd G含量的影响第50-51页
            2.2.4.4 含药血清对高糖培养INS-1 细胞中抗氧化酶活性的影响第51页
        2.2.5 含药血清对高糖培养INS-1 细胞凋亡的影响第51-57页
            2.2.5.1 含药血清对高糖培养INS-1 细胞形态结构的影响第51页
            2.2.5.2 Hoechst 33342检测含药血清对高糖培养INS-1 细胞凋亡的影响第51-52页
            2.2.5.3 含药血清对高糖培养INS-1 细胞线粒体膜电位的影响第52页
            2.2.5.4 免疫荧光检测含药血清对高糖培养INS-1 细胞Cyt-c蛋白表达的影响第52-53页
            2.2.5.5 Western-blot检测含药血清对高糖培养INS-1 细胞Cyt-c蛋白表达的影响第53-54页
            2.2.5.6 RT-PCR检测含药血清对高糖培养INS-1 细胞Cyt-c基因表达的影响第54-57页
        2.2.6 含药血清对高糖培养INS-1 细胞线粒体能量代谢的影响第57-58页
            2.2.6.1 含药血清对高糖培养INS-1 细胞ATP合成的影响第57页
            2.2.6.2 含药血清对高糖培养INS-1 细胞线粒体呼吸链的影响第57页
            2.2.6.3 免疫荧光检测含药血清对高糖培养INS-1 细胞UCP-2 蛋白表达的影响第57-58页
            2.2.6.4 Western-blot检测含药血清对高糖培养INS-1 细胞UCP-2 蛋白表达的影响第58页
            2.2.6.5 RT-PCR检测含药血清对高糖培养INS-1 细胞UCP-2 基因表达的影响第58页
        2.2.7 含药血清对高糖培养INS-1 细胞胰岛素合成和分泌的影响第58-60页
            2.2.7.1 免疫荧光法含药血清对高糖培养INS-1 细胞内insulin、PDX-1 蛋白表达影响第58页
            2.2.7.2 Western-blot检测免疫荧光检测含药血清对高糖培养INS-1 细胞内insulin、PDX-1 蛋白表达影响第58-59页
            2.2.7.3 RT-PCR检测含药血清对高糖培养INS-1 细胞内insulin、PDX-1 基因表达影响第59页
            2.2.7.4 含药血清对高糖培养INS-1 细胞内Ca2+浓度的影响第59-60页
3 结果与分析第60-92页
    3.1 桑叶多糖MLP对糖尿病大鼠机体组织氧化应激的改善作用研究第60-68页
        3.1.1 桑叶多糖MLP对糖尿病大鼠机体组织氧化应激损伤的影响第60-61页
        3.1.2 桑叶多糖MLP对糖尿病大鼠机体组织形态结构的影响第61-64页
            3.1.2.1 桑叶多糖MLP对糖尿病大鼠胰岛形态结构的影响第61-62页
            3.1.2.2 桑叶多糖MLP对糖尿病大鼠肝脏形态结构的影响第62-63页
            3.1.2.3 桑叶多糖MLP对糖尿病大鼠肌肉形态结构的影响第63-64页
        3.1.3 桑叶多糖MLP对糖尿病大鼠机体组织功能的影响第64-67页
            3.1.3.1 桑叶多糖MLP对糖尿病大鼠胰岛素分泌的影响第64-65页
            3.1.3.2 桑叶多糖 MLP 对糖尿病大鼠肝脏中糖原合成酶活性的影响第65-66页
            3.1.3.3 桑叶多糖MLP对糖尿病大鼠肌肉中葡萄糖转运蛋白 4(GLUT-4)的影响第66-67页
        3.1.4 桑叶多糖MLP对糖尿病大鼠机体组织中抗氧化酶活性的影响第67-68页
    3.2 含药血清对 INS-1 细胞毒性作用研究第68-72页
        3.2.1 正常空白血清对INS-1 细胞毒性作用研究第68-69页
        3.2.2 含NAC血清对INS-1 细胞毒性作用研究第69-70页
        3.2.3 含MLP血清对INS-1 细胞毒性作用研究第70-72页
    3.3 MLP对高糖培养INS-1 细胞功能的作用研究第72-74页
        3.3.1 MLP对高糖培养INS-1 细胞活力的影响第72-73页
        3.3.2 MLP对高糖培养INS-1 细胞葡萄糖刺激的胰岛素分泌(GSIS)的影响第73页
        3.3.3 MLP对高糖培养INS-1 细胞 48h内葡萄糖刺激的胰岛素分泌(GSIS)动态的影响第73-74页
    3.4 MLP对高糖培养INS-1 细胞氧化应激的影响第74-80页
        3.4.1 MLP对高糖培养INS-1 细胞形态结构的影响第74-75页
        3.4.2 MLP对高糖培养INS-1 细胞中ROS含量的影响第75-77页
        3.4.3 MLP对高糖培养INS-1 细胞中MDA含量的影响第77-78页
        3.4.4 MLP对高糖培养INS-1 细胞中 8-OHd G含量的影响第78页
        3.4.5 MLP对高糖培养INS-1 细胞中抗氧化酶活性的影响第78-80页
    3.5 MLP对高糖培养INS-1 细胞线粒体能量代谢的影响第80-82页
        3.5.1 MLP对高糖培养INS-1 细胞ATP含量的影响第80页
        3.5.2 MLP对高糖培养INS-1 细胞线粒体呼吸链复合酶活性的影响第80-81页
        3.5.3 MLP对高糖培养INS-1 细胞线粒体UCP-2 表达的影响第81-82页
    3.6 MLP对高糖培养INS-1 细胞凋亡的影响第82-87页
        3.6.1 MLP对高糖培养INS-1 细胞凋亡的影响第82-83页
        3.6.2 MLP对高糖培养INS-1 细胞线粒体膜电位的影响第83-85页
        3.6.3 MLP对高糖培养INS-1 细胞中细胞色素c (Cyt-c)表达的影响第85-87页
    3.7 MLP对高糖培养INS-1 细胞胰岛素合成和分泌机制的影响第87-92页
        3.7.1 MLP对高糖培养INS-1 细胞胰岛素表达的影响第87-89页
        3.7.2 MLP对高糖培养INS-1 细胞PDX-1 表达的影响第89-91页
        3.7.3 MLP对高糖培养INS-1 细胞中Ca2+浓度的影响第91-92页
4 讨论第92-98页
    4.1 桑叶多糖MLP对2型糖尿病大鼠机体组织氧化应激的影响第92-93页
    4.2 含桑叶多糖MLP大鼠血清的制备第93-94页
    4.3 桑叶多糖MLP对体外高糖培养INS-1 的抗氧化作用研究第94-98页
        4.3.1 桑叶多糖MLP对线粒体氧化应激的影响第94-95页
        4.3.2 桑叶多糖MLP对线粒体氧化应激诱导的细胞凋亡影响第95-96页
        4.3.3 桑叶多糖MLP对胰岛素分泌的影响第96-98页
5 结论第98-99页
参考文献第99-115页
致谢第115-116页
攻读学位期间发表的论文及获奖情况第116-117页

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