| 摘要 | 第7-10页 |
| ABSTRACT | 第10-13页 |
| 缩略词表 | 第14-16页 |
| 前言 | 第16-18页 |
| 第一章 文献综述 | 第18-36页 |
| 1 植物茎分枝的研究进展 | 第18-28页 |
| 1.1 植物茎分枝的定义和分类 | 第18-20页 |
| 1.2 植物茎分枝的生物学意义 | 第20页 |
| 1.3 植物茎分枝的发生机制 | 第20-22页 |
| 1.4 影响植物茎分枝的主要因素 | 第22-28页 |
| 2 植物数量性状基因效应的遗传研究方法 | 第28-30页 |
| 2.1 世代均数法和遗传方差法 | 第28页 |
| 2.2 混合模型法 | 第28-29页 |
| 2.3 主基因+多基因混合遗传模型的应用 | 第29-30页 |
| 3 高通量测序技术(high-throughput sequencing,HTS)的发展及应用 | 第30-34页 |
| 3.1 高通量测序技术(HTS)在基因组学中的应用 | 第30-31页 |
| 3.2 高通量测序技术(HTS)在转录组学中的应用 | 第31-33页 |
| 3.3 高通量测序技术(HTS)在表观基因组学研究中的应用 | 第33-34页 |
| 4 本研究的依据、目的意义和研究内容 | 第34-36页 |
| 4.1 本研究的依据 | 第34-35页 |
| 4.2 本研究的目的和意义 | 第35页 |
| 4.3 本研究的主要内容 | 第35-36页 |
| 第二章 不结球白菜分蘖性状的特点和品质测定 | 第36-46页 |
| 1 材料与方法 | 第37-39页 |
| 1.1 试验材料 | 第37页 |
| 1.2 不结球白菜分蘖性状营养生长期形态学观察 | 第37页 |
| 1.3 不结球白菜分蘖性状发育时期组织切片观察 | 第37页 |
| 1.4 硝态氮含量测定 | 第37-38页 |
| 1.5 可溶性糖含量测定 | 第38页 |
| 1.6 可溶性蛋白含量测定 | 第38-39页 |
| 1.7 V_c含量测定 | 第39页 |
| 2 结果与分析 | 第39-43页 |
| 2.1 不结球白菜分蘖性状表型特点 | 第39-41页 |
| 2.2 不结球白菜分蘖性状组织细胞学特点 | 第41-43页 |
| 2.3 不结球白菜分蘖菜与不分蘖菜品质相关的生理指标比较分析 | 第43页 |
| 3 讨论 | 第43-46页 |
| 第三章 激素对不结球白菜分蘖性状的影响 | 第46-60页 |
| 1 材料和方法 | 第47-52页 |
| 1.1 试验材料 | 第47-48页 |
| 1.2 试验方法 | 第48-52页 |
| 2 结果与分析 | 第52-57页 |
| 2.1 '苏州青'和'马耳头'茎分生组织中内源激素含量动态分析 | 第52-53页 |
| 2.2 独脚金内酯和细胞分裂素对'马耳头'侧芽的互作关系 | 第53-54页 |
| 2.3 独脚金内酯响应基因和细胞分裂素响应基因的表达差异 | 第54-57页 |
| 3 讨论 | 第57-60页 |
| 第四章 不结球白菜分蘖数和叶片数的遗传模型分析 | 第60-74页 |
| 1 材料与方法 | 第61-62页 |
| 1.1 试验材料与田间试验设计 | 第61页 |
| 1.2 统计分析方法 | 第61-62页 |
| 2 结果与分析 | 第62-72页 |
| 2.1 六世代遗传群体分蘖数和叶片数的统计分析 | 第62-65页 |
| 2.2 F_2群体的次数分布 | 第65-66页 |
| 2.3 遗传模型的选择及适合性检验 | 第66页 |
| 2.4 遗传参数估计 | 第66-72页 |
| 2.5 分蘖数与叶片数的相关性分析 | 第72页 |
| 3 讨论 | 第72-74页 |
| 第五章 不结球白菜分蘖性状BSA-简化基因组测序分析及候选基因筛选 | 第74-94页 |
| 1 材料和方法 | 第75-79页 |
| 1.1 试验材料 | 第75-76页 |
| 1.2 样品DNA的提取 | 第76-77页 |
| 1.3 简化基因组测序实验流程 | 第77页 |
| 1.4 简化基因组信息分析方法 | 第77页 |
| 1.5 RNA的提取 | 第77-78页 |
| 1.6 cDNA合成及定量实验 | 第78-79页 |
| 2 结果与分析 | 第79-91页 |
| 2.1 测序数据评估及SLAF标记开发 | 第79-81页 |
| 2.2 群体差异分析及关联性分析 | 第81-84页 |
| 2.3 A级区域中292个基因的转录水平分析 | 第84-86页 |
| 2.4 不同发育时期Bra011210基因和Bra011149基因的定量表达分析 | 第86-91页 |
| 3 讨论 | 第91-94页 |
| 第六章 不结球白菜分蘖性状SSR分子标记的开发 | 第94-102页 |
| 1 材料和方法 | 第95-98页 |
| 1.1 试验材料 | 第95页 |
| 1.2 试验方法 | 第95-98页 |
| 2 结果与分析 | 第98-100页 |
| 2.1 基于SLAF测序结果的SSR引物的筛选 | 第98-99页 |
| 2.2 SSR分析 | 第99-100页 |
| 3 讨论 | 第100-102页 |
| 第七章 不结球白菜分蘖性状转录组学分析 | 第102-122页 |
| 1 材料和方法 | 第103-105页 |
| 1.1 试验材料 | 第103-104页 |
| 1.2 RNA提取 | 第104页 |
| 1.3 cDNA文库的构建和测序 | 第104页 |
| 1.4 无参转录组(De novo transcriptome)数据的从头组装 | 第104-105页 |
| 1.5 数据处理及拼接转录本的功能注释 | 第105页 |
| 2 结果与分析 | 第105-121页 |
| 2.1 转录组测序数据评估及组装 | 第105-106页 |
| 2.2 转录组数据库基因的功能注释及分类 | 第106-109页 |
| 2.3 SSR分析 | 第109-110页 |
| 2.4 基于样本间基因表达的整体分析 | 第110-113页 |
| 2.5 组织特异性基因表达和功能分析 | 第113-117页 |
| 2.6 细胞分裂素合成及信号途径的关键基因的表达分析 | 第117-120页 |
| 2.7 Q-PCR定量验证 | 第120-121页 |
| 3 讨论 | 第121-122页 |
| 全文结论 | 第122-124页 |
| 本文创新之处 | 第124-126页 |
| 参考文献 | 第126-140页 |
| 附录 | 第140-150页 |
| 在读期间发表的学术论文 | 第150-152页 |
| 致谢 | 第152页 |
