| 学位论文的主要创新点 | 第3-4页 |
| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第10-20页 |
| 1.1 研究背景 | 第10-11页 |
| 1.1.1 水资源现状 | 第10页 |
| 1.1.2 膜法饮用水处理技术 | 第10-11页 |
| 1.2 超滤分离技术概述 | 第11-12页 |
| 1.2.1 超滤原理 | 第11页 |
| 1.2.2 超滤水处理的优缺点 | 第11-12页 |
| 1.3 超滤膜污染 | 第12-15页 |
| 1.3.1 超滤膜污染的形成 | 第12-13页 |
| 1.3.2 超滤膜污染的影响因素 | 第13页 |
| 1.3.3 超滤膜污染研究现状 | 第13-15页 |
| 1.4 激光共聚焦显微镜 | 第15-17页 |
| 1.4.1 激光共聚焦显微镜概述 | 第15页 |
| 1.4.2 激光共聚焦显微镜的工作原理 | 第15-16页 |
| 1.4.3 激光共聚焦显微镜在表征膜污染中的应用 | 第16-17页 |
| 1.5 本课题研究目的、意义和主要内容 | 第17-20页 |
| 1.5.1 研究目的及意义 | 第17页 |
| 1.5.2 研究内容与技术路线 | 第17-20页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第20-28页 |
| 2.1 实验材料与仪器 | 第20-21页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第20页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第20-21页 |
| 2.2 实验装置 | 第21-23页 |
| 2.2.1 膜组件设计 | 第21-22页 |
| 2.2.2 实验装置 | 第22-23页 |
| 2.3 实验方法 | 第23-24页 |
| 2.3.1 FITC标记BSA | 第23页 |
| 2.3.2 rhodamine123标记SA | 第23-24页 |
| 2.3.3 多巴胺亲水改性PVDF中空纤维膜 | 第24页 |
| 2.4 分析方法 | 第24-28页 |
| 2.4.1 截留率 | 第24-25页 |
| 2.4.2 膜阻力分析 | 第25页 |
| 2.4.3 CLSM定位及定量分析 | 第25-28页 |
| 第三章 牛血清蛋白的超滤膜污染空间分布规律研究 | 第28-44页 |
| 3.1 荧光标记对BSA过滤过程的影响 | 第28-29页 |
| 3.2 通量对膜污染的影响 | 第29-32页 |
| 3.2.1 跨膜压差 | 第29-30页 |
| 3.2.2 截留率 | 第30-31页 |
| 3.2.3 膜阻力 | 第31-32页 |
| 3.2.4 通量恢复率 | 第32页 |
| 3.3 BSA对PVDF膜污染行为的CLSM分析 | 第32-38页 |
| 3.3.1 动态变化特征 | 第32-36页 |
| 3.3.2 通量的影响 | 第36-38页 |
| 3.4 表面吸附对膜污染物分布的影响 | 第38-43页 |
| 3.4.1 静态与动态吸附 | 第38-40页 |
| 3.4.2 膜清洗 | 第40-43页 |
| 3.5 本章小结 | 第43-44页 |
| 第四章 牛血清蛋白和海藻酸钠共存时膜污染行为研究 | 第44-52页 |
| 4.1 BSA与SA共存时膜过滤性能 | 第44-47页 |
| 4.1.1 跨膜压差 | 第44-45页 |
| 4.1.2 截留率的变化 | 第45-46页 |
| 4.1.3 膜阻力 | 第46页 |
| 4.1.4 通量恢复率 | 第46-47页 |
| 4.2 BSA和SA共存时膜致污物空间分布 | 第47-50页 |
| 4.2.1 膜断面 | 第47-49页 |
| 4.2.2 膜外表面 | 第49-50页 |
| 4.3 本章小结 | 第50-52页 |
| 第五章 多巴胺亲水改性对超滤膜中BSA空间分布的影响 | 第52-60页 |
| 5.1 改性膜过滤性能 | 第53-56页 |
| 5.1.1 跨膜压差 | 第53页 |
| 5.1.2 截留率 | 第53-54页 |
| 5.1.3 膜阻力 | 第54-55页 |
| 5.1.4 通量恢复率 | 第55-56页 |
| 5.2 改性膜污染物分布及定性定量分析 | 第56-58页 |
| 5.2.1 膜断面荧光图分析 | 第56-57页 |
| 5.2.2 膜外表面 | 第57-58页 |
| 5.3 本章小节 | 第58-60页 |
| 第六章 结论与建议 | 第60-62页 |
| 6.1 实验结论 | 第60-61页 |
| 6.2 建议与展望 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-68页 |
| 论文发表情况 | 第68-70页 |
| 致谢 | 第70页 |