| 致谢 | 第6-7页 |
| 前言 | 第7-11页 |
| 中文摘要 | 第11-16页 |
| Abstract | 第16-21页 |
| 论文创新点 | 第22-23页 |
| 中/英文缩写词对照表 | 第23-28页 |
| 第一部分 腹腔注射脂多糖致大鼠炎症模型海马区损伤及修复表征 | 第28-49页 |
| 引言 | 第28-30页 |
| 1.1 实验仪器与材料 | 第30-32页 |
| 1.1.1 实验仪器 | 第30-31页 |
| 1.1.2 实验材料 | 第31-32页 |
| 1.2 方法 | 第32-36页 |
| 1.2.1 Western Blot样本制备 | 第32页 |
| 1.2.2 震荡切片样本制备 | 第32页 |
| 1.2.3 切片 | 第32-33页 |
| 1.2.4 染色 | 第33-34页 |
| 1.2.5 Western Blot检测大鼠海马及皮层相关蛋白表达的变化 | 第34-35页 |
| 1.2.6 一步法TUNEL细胞凋亡检测 | 第35-36页 |
| 1.2.7 数据分析 | 第36页 |
| 1.3 实验结果 | 第36-44页 |
| 1.3.1 大鼠腹腔注射LPS致海马区损伤 | 第36-37页 |
| 1.3.2 给大鼠腹腔注射LPS致海马区损伤相关蛋白的表达 | 第37-38页 |
| 1.3.3 大鼠腹腔注射LPS致海马区神经元损伤伴轴突受损 | 第38-39页 |
| 1.3.4 大鼠腹腔注射LPS致海马CA1、CA4区域神经元损伤 | 第39-41页 |
| 1.3.5 海马DG区神经前体细胞激活 | 第41-43页 |
| 1.3.6 海马DG区神经前体细胞迁移 | 第43-44页 |
| 1.4 讨论 | 第44-48页 |
| 1.5 小结 | 第48-49页 |
| 第二部分 腹腔注射脂多糖致大鼠海马Junctophilin-3/4介导的吞噬现象 | 第49-70页 |
| 引言 | 第49-51页 |
| 2.1 实验仪器与材料 | 第51-52页 |
| 2.1.1 实验仪器 | 第51页 |
| 2.1.2 实验材料 | 第51-52页 |
| 2.2 方法 | 第52-56页 |
| 2.2.1 Western Blot及IP样本制备 | 第52-53页 |
| 2.2.2 震荡切片样本制备 | 第53页 |
| 2.2.3 切片 | 第53-54页 |
| 2.2.4 免疫荧光化学 | 第54页 |
| 2.2.5 Western Blot检测大鼠海马及皮层相关蛋白表达的变化 | 第54-55页 |
| 2.2.6 数据分析 | 第55-56页 |
| 2.3 实验结果 | 第56-65页 |
| 2.3.1 JP3蛋白表达 | 第56页 |
| 2.3.2 JP3在不同类型细胞中的表达 | 第56-57页 |
| 2.3.3 海马CA1区Ca~(2+)相关蛋白表达 | 第57-58页 |
| 2.3.4 JP3与Ca~(2+)相关蛋白间的相互作用 | 第58-60页 |
| 2.3.5 海马JP4与Ca~(2+)相关蛋白间的相互作用 | 第60页 |
| 2.3.6 海马区胶质细胞激活 | 第60-61页 |
| 2.3.7 海马区胶质细胞激活伴JP3高表达 | 第61-63页 |
| 2.3.8 JP3与Megf10的相互作用 | 第63页 |
| 2.3.9 JP4与Megf10的相互作用 | 第63-65页 |
| 2.3.10 星形胶质细胞、小胶质细胞在吞噬过程中分工不同 | 第65页 |
| 2.4 讨论 | 第65-68页 |
| 2.5 结论 | 第68-70页 |
| 结论 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-79页 |
| 综述 | 第79-92页 |
| 参考文献 | 第85-92页 |
| 作者简历及在读期间取得的科研成果 | 第92-94页 |
