| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第1章 绪论 | 第14-27页 |
| 1.1 纳米生物传感技术 | 第14-16页 |
| 1.1.1 纳米技术简介 | 第14-15页 |
| 1.1.2 生物传感技术简介 | 第15-16页 |
| 1.2 纳米材料的分类 | 第16-18页 |
| 1.2.1 零维纳米材料 | 第16页 |
| 1.2.2 一维纳米材料 | 第16-17页 |
| 1.2.3 二维纳米材料 | 第17页 |
| 1.2.4 三维纳米材料 | 第17-18页 |
| 1.3 二维纳米材料及其在生物传感方面的应用 | 第18-23页 |
| 1.3.1 二维纳米材料的兴起 | 第18页 |
| 1.3.2 二维纳米材料代表-石墨烯 | 第18-21页 |
| 1.3.3 发光二维纳米材料代表-石墨氮化碳（g-C_3N_4）纳米片 | 第21-23页 |
| 1.4 多肽自组装技术 | 第23-25页 |
| 1.4.1 多肽自组装简介 | 第23-25页 |
| 1.4.2 多肽自组装在生物传感方面的应用 | 第25页 |
| 1.5 本研究论文的工作内容 | 第25-27页 |
| 第2章 石墨氮化碳纳米片表面组装黑色素类纳米猝灭剂用于酪氨酸酶活性及其抑制剂的分析 | 第27-39页 |
| 2.1 前言 | 第27-28页 |
| 2.2 实验部分 | 第28-30页 |
| 2.2.1 试剂与材料 | 第28页 |
| 2.2.2 仪器与表征 | 第28-29页 |
| 2.2.3 g-C_3N_4纳米片的制备 | 第29页 |
| 2.2.4 g-C_3N_4纳米片@黑色素类聚合物用于酪氨酸酶活性分析及其抑制剂筛选 | 第29页 |
| 2.2.5 细胞培养以及从Hela细胞中提取细胞裂解液 | 第29-30页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第30-38页 |
| 2.3.0 实验原理 | 第30-31页 |
| 2.3.1 g-C_3N_4纳米片的表征 | 第31-32页 |
| 2.3.2 实验原理验证 | 第32-35页 |
| 2.3.3 实验响应性能研究 | 第35-36页 |
| 2.3.4 实验特异性评价 | 第36-37页 |
| 2.3.5 酪氨酸酶抑制剂的筛选 | 第37-38页 |
| 2.4 小结 | 第38-39页 |
| 第3章 基于石墨氮化碳纳米片的比率型荧光探针用于过氧化氢和葡萄糖的检测 | 第39-50页 |
| 3.1 前言 | 第39-40页 |
| 3.2 实验部分 | 第40-41页 |
| 3.2.1 试剂与材料 | 第40页 |
| 3.2.2 表征 | 第40页 |
| 3.2.3 H_2O_2的荧光定量分析 | 第40页 |
| 3.2.4 葡萄糖的荧光定量分析 | 第40-41页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第41-49页 |
| 3.3.1 实验原理 | 第41页 |
| 3.3.2 g-C_3N_4纳米片的表征 | 第41-43页 |
| 3.3.3 H_2O_2的比率型荧光传感机理 | 第43-45页 |
| 3.3.4 H_2O_2的比率型荧光传感响应性能研究 | 第45-46页 |
| 3.3.5 葡萄糖的荧光比率型传感响应性能研究 | 第46-47页 |
| 3.3.6 实验特异性评价 | 第47-49页 |
| 3.4 小结 | 第49-50页 |
| 第4章 肿瘤靶向性的石墨氮化碳纳米片组装体用于激活式双光子成像 | 第50-58页 |
| 4.1 前言 | 第50页 |
| 4.2 实验部分 | 第50-52页 |
| 4.2.1 试剂和材料 | 第50-51页 |
| 4.2.2 表征 | 第51页 |
| 4.2.3 制备质子化的g-C_3N_4纳米片 | 第51页 |
| 4.2.4 FRET传感体系用于HAase检测 | 第51-52页 |
| 4.2.5 细胞培养与双光子成像 | 第52页 |
| 4.2.6 细胞毒性分析 | 第52页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第52-57页 |
| 4.3.1 实验原理 | 第52-53页 |
| 4.3.2 HA-AuNPs/g-C_3N_4纳米组装体表征 | 第53-54页 |
| 4.3.3 实验机理验证 | 第54-55页 |
| 4.3.4 HA-AuNPs/g-C_3N_4纳米体系对HAase的响应性能分析 | 第55-56页 |
| 4.3.5 HA-AuNPs/g-C_3N_4纳米体系用于细胞内HAase成像分析 | 第56-57页 |
| 4.4 小结 | 第57-58页 |
| 第5章 在氧化石墨烯表面以DNA为模版合成银纳米用于高灵敏检测H_2O_2和葡萄糖 | 第58-67页 |
| 5.1 前言 | 第58-59页 |
| 5.2 实验部分 | 第59-61页 |
| 5.2.1 试剂与仪器 | 第59-60页 |
| 5.2.2 AgNPs-DNA@GO的合成 | 第60页 |
| 5.2.3 琼脂糖凝胶电泳分析 | 第60页 |
| 5.2.4 H_2O_2的荧光检测 | 第60页 |
| 5.2.5 葡萄糖的荧光检测 | 第60-61页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第61-65页 |
| 5.3.1 实验原理的验证 | 第61-62页 |
| 5.3.2 实验条件优化 | 第62-63页 |
| 5.3.3 分析方法的响应性能研究 | 第63-65页 |
| 5.4 小结 | 第65-67页 |
| 第6章 逐级激活的、自组装的多肽纳米信标用于高特异性肿瘤成像 | 第67-79页 |
| 6.1 前言 | 第67-68页 |
| 6.2 实验部分 | 第68-71页 |
| 6.2.1 试剂与材料 | 第68-69页 |
| 6.2.2 ELPNBs探针制备与表征 | 第69页 |
| 6.2.3 体外酶活性与特异性研究 | 第69-70页 |
| 6.2.4 细胞孵育与荧光成像 | 第70页 |
| 6.2.5 流式实验分析 | 第70页 |
| 6.2.6 细胞毒性分析 | 第70-71页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第71-78页 |
| 6.3.1 实验设计原理 | 第71-72页 |
| 6.3.2 ELPNBs纳米探针表征 | 第72页 |
| 6.3.3 ELPNBs纳米组装体体外性能研究 | 第72-74页 |
| 6.3.4 ELPNBs纳米组装体活细胞成像 | 第74-78页 |
| 6.4 小结 | 第78-79页 |
| 结论 | 第79-81页 |
| 参考文献 | 第81-100页 |
| 附录A 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第100-101页 |
| 致谢 | 第101页 |
