三叶木通果实成熟过程中乙烯合成相关基因的表达分析
摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-7页 |
第一章 前言 | 第7-16页 |
·三叶木通研究概况 | 第7-9页 |
·三叶木通形态学、生态学研究及分布 | 第7-8页 |
·三叶木通化学成分及药理作用研究 | 第8页 |
·三叶木通栽培技术研究 | 第8-9页 |
·转录组测序研究 | 第9-10页 |
·高通量测序技术 | 第9页 |
·转录组测序技术的应用 | 第9-10页 |
·实时荧光定量PCR技术 | 第10-13页 |
·定量方法 | 第10-11页 |
·实时荧光定量PCR技术的应用 | 第11页 |
·稳定内参基因筛选 | 第11-12页 |
·稳定内参基因筛选研究进展 | 第12-13页 |
·乙烯 | 第13-14页 |
·乙烯合成途径 | 第13页 |
·乙烯调控果实开裂 | 第13-14页 |
·乙烯合成相关基因研究进展 | 第14页 |
·高效液相色谱 | 第14页 |
·研究目的及意义 | 第14-15页 |
·研究内容 | 第15-16页 |
第二章 三叶木通果实转录组测序 | 第16-33页 |
·材料与方法 | 第16-18页 |
·植物材料 | 第16页 |
·主要试剂 | 第16页 |
·主要仪器 | 第16页 |
·试验方法 | 第16-18页 |
·结果与分析 | 第18-31页 |
·RNA质量检测结果 | 第18-19页 |
·转录组测序数据统计 | 第19-20页 |
·转录组数据组装结果 | 第20-21页 |
·Unigenes的功能注释结果统计 | 第21-28页 |
·果实生长情况 | 第28-31页 |
·讨论 | 第31-33页 |
第三章 三叶木通果实稳定内参基因筛选 | 第33-44页 |
·材料与方法 | 第33-34页 |
·植物材料 | 第33页 |
·主要试剂 | 第33页 |
·主要仪器 | 第33页 |
·软件 | 第33页 |
·试验方法 | 第33-34页 |
·结果与分析 | 第34-43页 |
·候选内参基因筛选及引物设计结果 | 第34-36页 |
·内参基因实时荧光定量PCR试验Ct值 | 第36-37页 |
·稳定内参基因初步筛选结果 | 第37-39页 |
·稳定内参基因二次筛选结果 | 第39-41页 |
·三叶木通果实成熟过程中内参基因筛选结果 | 第41-42页 |
·内参基因标准曲线与溶解曲线 | 第42-43页 |
·讨论 | 第43-44页 |
第四章 乙烯合成相关基因表达分析 | 第44-61页 |
·材料与方法 | 第44-45页 |
·植物材料 | 第44页 |
·主要试剂 | 第44页 |
·主要仪器 | 第44页 |
·试验方法 | 第44-45页 |
·结果与分析 | 第45-59页 |
·三叶木通乙烯合成相关基因 | 第45-49页 |
·目的基因引物设计结果 | 第49页 |
·常规PCR结果 | 第49-50页 |
·测序结果对比 | 第50-51页 |
·目的基因实时荧光定量PCR标准曲线 | 第51页 |
·目的基因表达差异 | 第51-53页 |
·目的基因溶解曲线 | 第53-56页 |
·乙烯合成相关基因表达差异分析 | 第56-58页 |
·ACC含量测定 | 第58-59页 |
·讨论 | 第59-61页 |
第五章 结论 | 第61-62页 |
参考文献 | 第62-67页 |
致谢 | 第67-68页 |
附录 | 第68-69页 |