| 摘要 | 第1-11页 |
| ABSTRACT | 第11-22页 |
| 第一章 前言 | 第22-39页 |
| 参考文献 | 第32-39页 |
| 第二章 材料与方法 | 第39-65页 |
| 第1节 主要材料和试剂 | 第39-45页 |
| 1 细胞株 | 第39页 |
| 2 流式细胞术抗体 | 第39页 |
| 3 免疫印迹抗体 | 第39-40页 |
| 4 主要试剂 | 第40页 |
| 5 细胞培养试剂 | 第40页 |
| 6 实时荧光定量PCR试剂 | 第40-41页 |
| 7 蛋白印迹试剂 | 第41-44页 |
| 8 细胞迁移材料和试剂 | 第44-45页 |
| 第2节 主要实验仪器 | 第45-46页 |
| 第3节 主要实验方法 | 第46-58页 |
| 1 细胞培养及处理 | 第46-47页 |
| 2 流式细胞仪检测 | 第47-48页 |
| 3 细胞迁移实验 | 第48-49页 |
| 4 蛋白印迹检测 | 第49-52页 |
| 5 实时荧光定量PCR | 第52-56页 |
| 6 miRNA靶基因预测 | 第56-57页 |
| 7 miRNA靶基因的GO功能分类分析 | 第57页 |
| 8 miRNA靶基因基于KEGG的生物通路富集分析 | 第57-58页 |
| 第4节 miRNA芯片 | 第58-63页 |
| 1 制备RNA样品和RNA样品质量控制 | 第58-60页 |
| 2 miRNA标记 | 第60-61页 |
| 3 miRNA阵列杂交 | 第61-63页 |
| 4 miRNA阵列扫描和分析 | 第63页 |
| 第5节 统计学分析 | 第63-65页 |
| 第三章 结果 | 第65-133页 |
| 第1节 胃肠肿瘤细胞株中FasL和Fas的表达 | 第65-69页 |
| 第2节 AGS和SW480细胞中sFasL的非凋亡效应阈值浓度 | 第69-73页 |
| 第3节 低剂量sFasL促进AGS和SW480细胞的迁移能力 | 第73-77页 |
| 第4节 sFasL引起胃肠肿瘤细胞株的形态变化 | 第77-82页 |
| 第5节 sFasL诱导胃肠肿瘤细胞株EMT标志蛋白表达变化 | 第82-86页 |
| 第6节 sFasL依赖于ERK通路诱导肿瘤细胞发生EMT | 第86-91页 |
| 第7节 sFasL引起EMT标志蛋白的短时间表达变化 | 第91-92页 |
| 第8节 低剂量sFasL引起AGS和SW480中miRNA的表达差异 | 第92-100页 |
| 第9节 AGS和SW480中差异表达miRNA的靶基因预测 | 第100-106页 |
| 第10节 差异表达miRNA靶基因的GO基因功能分类 | 第106-111页 |
| 第11节 差异表达miRNA靶基因的通路分析 | 第111-117页 |
| 第12节 Adherens junction通路中靶基因及对应miRNA筛选 | 第117-119页 |
| 第13节 AGS中差异表达miRNA的验证 | 第119-128页 |
| 第14节 AGS中差异表达miRNA靶基因的表达 | 第128-133页 |
| 第四章 讨论 | 第133-139页 |
| 参考文献 | 第139-144页 |
| 第五章 综述 | 第144-166页 |
| 第1节 Fas调控凋亡和非凋亡效应的机制 | 第144-149页 |
| 第2节 上皮-间充质转化 | 第149-150页 |
| 第3节 粘着连接结构的内吞调节 | 第150-155页 |
| 第4节 miRNA对EMT的调控 | 第155-159页 |
| 参考文献 | 第159-166页 |
| 致谢 | 第166-168页 |
| 博士研宄生期间发表论文情况 | 第168-170页 |
| 附件 | 第170页 |
