| 中文摘要 | 第1-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 第一部分 文献综述 | 第11-29页 |
| 1. 世界粮食产量现状及改善措施 | 第11-12页 |
| ·世界粮食产量现状 | 第11-12页 |
| ·提高粮食产量的策略 | 第12页 |
| 2. 光合途径分类及 C4 光合途径研究现状 | 第12-15页 |
| ·光合途径的分类 | 第12-13页 |
| ·C4 光合途径研究现状 | 第13-15页 |
| ·C4 植物简介 | 第13页 |
| ·C4 植物分类 | 第13-14页 |
| ·C4 植物光合的高效性 | 第14-15页 |
| 3. C4 模式植物青狐尾草(Setaria viridis) | 第15-16页 |
| 4. 论文实验策略及设计 | 第16-17页 |
| ·论文实验策略 | 第16页 |
| ·论文实验设计流程 | 第16-17页 |
| 5. 青狐尾草突变体库的筛选 | 第17-20页 |
| ·实验室青狐尾草突变体的诱导方法 | 第17-18页 |
| ·实验室青狐尾草突变体筛选情况 | 第18-20页 |
| 6. 光胁迫敏感突变体研究现状 | 第20-22页 |
| 7. 青狐尾草 zebra 突变体研究策略 | 第22-23页 |
| 8. 卡尔文循环简介 | 第23-27页 |
| ·卡尔文循环的地位 | 第23页 |
| ·卡尔文循环的催化过程 | 第23-24页 |
| ·Rubisco 酶在卡尔文循环中的地位 | 第24-25页 |
| ·SBPase 酶的重要性 | 第25-27页 |
| ·SBPase 基因的研究 | 第27页 |
| 9. 模式植物青狐尾草的转化 | 第27-29页 |
| ·实验室青狐尾草转化现状 | 第27-28页 |
| ·青狐尾草转化方法简介 | 第28-29页 |
| 第二部分 实验论文 | 第29-56页 |
| 1. 实验材料与方法 | 第29-56页 |
| ·实验材料 | 第29-30页 |
| ·植物材料 | 第29页 |
| ·质粒载体 | 第29页 |
| ·所用菌种 | 第29页 |
| ·化学试剂与试验用酶 | 第29-30页 |
| ·仪器 | 第30页 |
| ·青狐尾草 zebra 突变体生理生化研究 | 第30-37页 |
| ·外界环境对 zebra 突变体表型的影响探究 | 第30-31页 |
| ·Trypan 蓝染色实验 | 第31页 |
| ·石蜡切片的制作 | 第31-33页 |
| ·叶片透射电镜实验 | 第33页 |
| ·Gs、Ci、Ls、Pn 光合数据的测定 | 第33页 |
| ·超氧化物歧化酶(SOD)活性的测定 | 第33-35页 |
| ·实际光化学效率(ΦPSII)测量 | 第35-36页 |
| ·叶绿素含量的测定 | 第36页 |
| ·叶片含水量测定 | 第36页 |
| ·杂交预试验 | 第36-37页 |
| ·预测突变基因的扩增 | 第37页 |
| ·SBPase 基因的克隆及载体构建 | 第37-47页 |
| ·青狐尾草总 RNA 提取(Trizol 法) | 第37-38页 |
| ·RNA 的反转录 | 第38-39页 |
| ·SBPase 基因的克隆 | 第39-40页 |
| ·SBPase 基因片段的回收(Glass Milk 方法)及克隆载体构建 | 第40-45页 |
| ·SBPase 基因表达载体的构建 | 第45-47页 |
| ·表达载体转化农杆菌 | 第47-49页 |
| ·农杆菌 AGL1 感受态的制备 | 第47-48页 |
| ·表达载体转化农杆菌 | 第48-49页 |
| ·青狐尾草农杆菌转化 | 第49-52页 |
| ·青狐尾草愈伤组织的诱导及浸染转化 | 第49-51页 |
| ·青狐尾草丛生芽的诱导及浸染转化 | 第51-52页 |
| ·青狐尾草转化株鉴定 | 第52-56页 |
| ·青狐尾草转化株 DNA 的提取 | 第52-53页 |
| ·转化青狐尾草 PCR 验证 | 第53-54页 |
| ·转化株系的分离 | 第54页 |
| ·T2 代转化株的 PCR 验证 | 第54-56页 |
| 第三部分 实验结果 | 第56-89页 |
| 1. zebra 突变体研究结果 | 第56-72页 |
| ·外界处理环境对 zebra 突变体表型的影响 | 第56-58页 |
| ·叶片进行 Trypan 蓝染色结果 | 第58页 |
| ·zebra 突变体叶片石蜡切片 | 第58-59页 |
| ·zebra 突变体叶片投射电镜观察 | 第59-63页 |
| ·zebra 突变体 Gs、Ci、Ls、Pn 数据测定 | 第63-66页 |
| ·zebra 突变体 SOD 酶活测定 | 第66页 |
| ·zebra 突变体ΦPSII 测定 | 第66-67页 |
| ·zebra 突变体叶绿素含量测定 | 第67-68页 |
| ·zebra 突变体干物质及含水量测定 | 第68-69页 |
| ·青狐尾草杂交试验 | 第69-70页 |
| ·预测突变基因的体外扩增 | 第70-72页 |
| 2. 青狐尾草 SBPase 基因克隆、遗传转化 | 第72-87页 |
| ·SBPase 基因的克隆及载体构建 | 第72-78页 |
| ·SBPase 基因克隆载体构建 | 第72-74页 |
| ·pCAMBIA3301H-SBPase 表达载体构建 | 第74-76页 |
| ·pCAMBIA1300-SBPase 表达载体构建 | 第76-78页 |
| ·表达载体转化农杆菌的检测 | 第78页 |
| ·青狐尾草愈伤组织的诱导及浸染转化 | 第78-81页 |
| ·青狐尾草丛生芽的诱导及浸染转化 | 第81-83页 |
| ·青狐尾草转化株鉴定 | 第83-85页 |
| ·青狐尾草转化株系的分离 | 第85-86页 |
| ·青狐尾草 T2 代转化株 PCR 验证 | 第86-87页 |
| 3. 结果讨论 | 第87-89页 |
| ·青狐尾草 zebra 突变体探究结果分析 | 第87-88页 |
| ·青狐尾草 SBPase 基因过量表达及沉默植株构建结果分析 | 第88页 |
| ·后期工作安排 | 第88-89页 |
| 参考文献 | 第89-96页 |
| 附录 | 第96-97页 |
| 攻读学位期间发表的学术论著 | 第97-98页 |
| 致谢 | 第98页 |
