| 摘要 | 第1-11页 |
| Abstract | 第11-15页 |
| 第一部分 慢性砷暴露对小鼠海马神经元再生的抑制及其恢复 | 第15-51页 |
| （一） 前言 | 第15-17页 |
| （二） 材料与方法 | 第17-26页 |
| 1. 动物及处理 | 第17-19页 |
| ·砷含量测定的样品处理 | 第17-18页 |
| ·免疫荧光实验的样品处理 | 第18页 |
| ·提取 RNA 的样品处理 | 第18页 |
| ·组织病理学实验的样品处理 | 第18-19页 |
| 2. 总砷含量检测 | 第19-20页 |
| ·仪器与试剂 | 第19页 |
| ·稀释剂和标准溶液制备 | 第19-20页 |
| ·实验方法 | 第20页 |
| 3. 免疫荧光检测 | 第20页 |
| 4. 末端脱氧核苷酸转移酶 dUTP 缺口末端标记测定法及Fluoro-Jade C 染色实验 | 第20-22页 |
| ·末端脱氧核苷酸转移酶 dUTP 缺口末端标记测定法 | 第20-21页 |
| ·Fluoro-Jade C 染色实验 | 第21-22页 |
| 5. 组织病理学及免疫荧光的显微镜观察 | 第22页 |
| 6. 实时荧光定量 PCR 实验 | 第22-25页 |
| ·总 RNA 样品制备 | 第22-23页 |
| ·反转录反应 | 第23-24页 |
| ·Real time PCR | 第24-25页 |
| 7. Morris水迷宫实验 | 第25页 |
| ·隐藏平台获得实验 | 第25页 |
| ·空间搜索实验 | 第25页 |
| 8. 统计分析 | 第25-26页 |
| （三） 结果 | 第26-35页 |
| 1. 小鼠血清和大脑砷含量 | 第26-27页 |
| 2. 脑组织的组织病理学改变 | 第27-28页 |
| 3. 砷对细胞增殖的抑制及其恢复 | 第28-29页 |
| 4. 砷对神经元再生的抑制及其恢复 | 第29-31页 |
| 5. 各组间凋亡及死亡无显著差别 | 第31-32页 |
| 6. 海马 SOD1、SOD2 及 Wnt3 的 mRNA 表达 | 第32-34页 |
| 7. Morris 水迷宫实验 | 第34-35页 |
| （四） 讨论 | 第35-40页 |
| （五） 总结 | 第40-41页 |
| （六） 参考文献 | 第41-51页 |
| 第二部分 亚慢性砷暴露小鼠脑组织中 8-硝基鸟嘌呤的高表达 | 第51-61页 |
| （一） 前言 | 第51页 |
| （二） 材料与方法 | 第51-53页 |
| 1. 试剂 | 第51页 |
| 2. 动物及处理 | 第51-52页 |
| 3. 脑组织病理学观察 | 第52页 |
| 4. 8-NO2-G 免疫组化实验 | 第52-53页 |
| 5. 统计分析 | 第53页 |
| （三） 结果 | 第53-55页 |
| 1. 脑组织病理学观察 | 第53页 |
| 2. 脑组织中 8-NO2-G 的表达 | 第53-55页 |
| （四） 讨论 | 第55-56页 |
| （五） 总结 | 第56-57页 |
| （六） 参考文献 | 第57-61页 |
| 结论 | 第61-62页 |
| 综述 | 第62-80页 |
| 参考文献 | 第70-80页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第80-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
