致谢 | 第1-7页 |
摘要 | 第7-8页 |
第一章 文献综述 | 第8-13页 |
摘要 | 第8页 |
Abstract | 第8-9页 |
·SA 与植物抗生物胁迫的关系 | 第9页 |
·SA 在植物抗生物胁迫发挥着重要的作用 | 第9页 |
·SA 在植物抗生物胁迫中的分子机理 | 第9页 |
·SA 提高植物抗非生物逆境胁迫的研究 | 第9-12页 |
·SA 提高植物的抗非生物逆境胁迫效应 | 第9-11页 |
·SA 提高植物抗非生物逆境胁迫的分子机制 | 第11-12页 |
·SA 响应相关蛋白质的研究 | 第12页 |
·SA 诱导的生物胁迫和非生物胁迫的异同 | 第12-13页 |
第二章 本研究的目的与意义、研究内容及技术线路 | 第13-14页 |
·本研究的目的与意义 | 第13页 |
·本研究的研究内容 | 第13页 |
·本研究的技术线路 | 第13-14页 |
第三章 干旱胁迫条件下 SA 提高小麦幼苗蛋白组学变化研究 | 第14-37页 |
摘要 | 第14页 |
Abstract | 第14-15页 |
·材料与方法 | 第15-20页 |
·材料、试剂和仪器 | 第15-16页 |
·形态生理指标的测定 | 第16页 |
·蛋白质组学分析 | 第16-20页 |
·结果与分析 | 第20-32页 |
·干旱胁迫下 SA 对小麦幼苗生长参数的影响 | 第20-21页 |
·干旱胁迫下 SA 对小麦幼苗 MDA 含量的影响 | 第21-22页 |
·干旱胁迫下 SA 对小麦幼苗蛋白组学变化的影响 | 第22-31页 |
·SA 提高小麦幼苗抗干旱胁迫的通路分析 | 第31-32页 |
·结论与讨论 | 第32-37页 |
·生长参数的变化 | 第32页 |
·MDA 含量的变化 | 第32页 |
·干旱胁迫下 SA 诱导小麦幼苗蛋白组学差异变化 | 第32-36页 |
·SA 响应干旱胁迫蛋白质通路分析 | 第36-37页 |
第四章 SA 对干旱胁迫小麦幼苗 ASA-GSH 合成相关酶基因的差异表达分析 | 第37-50页 |
摘要 | 第37页 |
Abstract | 第37-38页 |
·材料与方法 | 第38-45页 |
·实验材料及处理 | 第38页 |
·qRT-PCR 所用仪器 | 第38-39页 |
·ASA 和 GSH 含量的测定 | 第39页 |
·TaGST1 和 TaGST2 基因 cDNA 序列的克隆 | 第39-43页 |
·ASA-GSH 合成相关酶基因的实时定量 PCR 鉴定 | 第43-45页 |
·结果与分析 | 第45-48页 |
·干旱胁迫下 SA 处理对 ASA 和 GSH 含量的影响 | 第45页 |
·TaGST1 和 TaGST2 基因 cDNA 序列的克隆 | 第45-47页 |
·干旱胁迫下 SA 处理小麦叶片内 ASA-GSH 合成相关酶基因在转录水平的差异 | 第47-48页 |
·结果与讨论 | 第48-50页 |
·干旱胁迫下 SA 对小麦幼苗叶片内 ASA 和 GSH 含量的影响 | 第48-49页 |
·干旱胁迫下 SA 对小麦幼苗叶片内 ASA-GSH 合成相关酶基因转录水平的影响 | 第49-50页 |
第五章 本文的主要结论、创新之处以及下一步研究计划 | 第50-51页 |
·主要结论 | 第50页 |
·创新之处 | 第50页 |
·下一步研究计划 | 第50-51页 |
攻读硕士学位期间发表文章及获得荣誉情况 | 第51-52页 |
参考文献 | 第52-60页 |
ABSTRACT | 第60-61页 |