| 学位论文数据集 | 第1-4页 |
| 摘要 | 第4-7页 |
| ABSTRACT | 第7-24页 |
| 第一章 绪论 | 第24-36页 |
| ·引言 | 第24页 |
| ·硫苷(GSLs) | 第24-30页 |
| ·硫苷（GSLs）简介 | 第24-25页 |
| ·硫苷（GSLs）的化学结构及分类 | 第25-26页 |
| ·硫苷（GSLs）的降解过程及降解产物 | 第26-27页 |
| ·硫苷（GSLs）和异硫酸氰酸酯的生物活性 | 第27-28页 |
| ·杀虫抑菌活性 | 第27页 |
| ·抗癌症活性 | 第27-28页 |
| ·其它的生物活性 | 第28页 |
| ·硫苷的提取及其分离纯化方法 | 第28-29页 |
| ·硫苷的检测方法的研究进展 | 第29页 |
| ·硫苷的降解产物之间的转化路径 | 第29-30页 |
| ·离子交换吸附技术 | 第30-32页 |
| ·离子交换吸附 | 第30-31页 |
| ·在天然产物分离中的应用 | 第31页 |
| ·树脂的化学修饰改性 | 第31-32页 |
| ·制备色谱技术 | 第32-33页 |
| ·制备色谱 (PHPLC) | 第32页 |
| ·应用于天然产物中的分离与纯化 | 第32-33页 |
| ·选课题的意义及其研究的主要内容 | 第33-36页 |
| ·课题的意义 | 第33-34页 |
| ·课题的研究主要内容 | 第34-36页 |
| 第二章 PGMA 及其改性修饰树脂的制备及表征 | 第36-60页 |
| ·引言 | 第36页 |
| ·相关理论 | 第36-37页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第37-38页 |
| ·实验的方法 | 第38-47页 |
| ·PGMA 树脂微球的制备 | 第38-39页 |
| ·PGMA 树脂微球的表征 | 第39-44页 |
| ·湿真密度的测量 | 第39-40页 |
| ·含水率的测量 | 第40页 |
| ·收缩率的测量 | 第40-41页 |
| ·孔度的测量 | 第41页 |
| ·比表面积的测量 | 第41-42页 |
| ·孔容的测量 | 第42页 |
| ·孔径的测量 | 第42-43页 |
| ·环氧值的测量 | 第43-44页 |
| ·形态结构 | 第44页 |
| ·粒径分布 | 第44页 |
| ·红外吸收 | 第44页 |
| ·PGMA-Ⅰ，PGMA-Ⅱ和 PGMA-Ⅲ树脂微球的制备 | 第44-45页 |
| ·PGMA-Ⅰ，PGMA-Ⅱ和 PGMA-Ⅲ树脂微球的表征 | 第45-47页 |
| ·离子交换容量 | 第45-46页 |
| ·形态结构 | 第46页 |
| ·红外表征 | 第46-47页 |
| ·实验结果与讨论 | 第47-59页 |
| ·PGMA 树脂微球制备参数工艺的考察 | 第47-52页 |
| ·PGMA 微球的表征 | 第52-54页 |
| ·形态结构分析 | 第52-53页 |
| ·红外分析 | 第53页 |
| ·理化分析 | 第53页 |
| ·粒径分布 | 第53-54页 |
| ·PGMA-Ⅰ，PGMA-Ⅱ和 PGMA-Ⅲ微球的偶联反应条件优化 | 第54-57页 |
| ·反应时间对离子交换容量的影响 | 第54页 |
| ·不同反应温度对离子交换容量的影响 | 第54-55页 |
| ·摩尔比对离子交换容量的影响 | 第55-57页 |
| ·PGMA-Ⅰ，PGMA-Ⅱ和 PGMA-Ⅲ微球的表征 | 第57-59页 |
| ·形态结构分析 | 第57页 |
| ·红外分析 | 第57-59页 |
| ·基本特性 | 第59页 |
| ·本章小结 | 第59-60页 |
| 第三章 制备的微球应用于芝麻菜籽中Glucoerucin的分离纯化研究 | 第60-82页 |
| ·引言 | 第60页 |
| ·相关理论 | 第60-62页 |
| ·吸附量、吸附率和解吸率 | 第60-61页 |
| ·吸附等温线 | 第61页 |
| ·吸附动力学曲线 | 第61-62页 |
| ·脱色率 | 第62页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第62-63页 |
| ·实验方法 | 第63-66页 |
| ·Glucoerucin 的粗提液的制备 | 第63页 |
| ·Glucoerucin 液相条件的确定 | 第63页 |
| ·对照品溶液的配置 | 第63页 |
| ·绘制标准曲线 | 第63-64页 |
| ·Glucoerucin 的静态吸附与解吸性能研究 | 第64-65页 |
| ·树脂的预处理 | 第64-65页 |
| ·树脂的静态吸附实验 | 第65页 |
| ·解吸实验 | 第65页 |
| ·不同解吸剂解吸效果比较 | 第65页 |
| ·动态吸附与解吸性能研究 | 第65-66页 |
| ·动态吸附穿透 | 第66页 |
| ·动态洗脱解吸 | 第66页 |
| ·Glucoerucin 粗提液的脱色性能研究 | 第66页 |
| ·树脂预处理 | 第66页 |
| ·脱色实验 | 第66页 |
| ·结果与讨论 | 第66-80页 |
| ·静态吸附与解吸 | 第66-72页 |
| ·筛树脂 | 第67-68页 |
| ·pH 对 PGMA-Ⅲ微球吸附硫苷 Glucoerucin 吸附性能的影响 | 第68页 |
| ·吸附等温线 | 第68-70页 |
| ·吸附动力学曲线 | 第70-71页 |
| ·不同解吸剂解吸性能比较 | 第71-72页 |
| ·动态吸附与解吸 | 第72-76页 |
| ·上样浓度的确定 | 第72-73页 |
| ·解吸剂流速的确定 | 第73-74页 |
| ·动态吸附解吸前后的液相色谱图比较 | 第74-76页 |
| ·脱色性能的研究 | 第76-80页 |
| ·脱色性能的比较 | 第76-77页 |
| ·脱色前后液相谱图的比较 | 第77-79页 |
| ·脱色原理 | 第79-80页 |
| ·本章小结 | 第80-82页 |
| 第四章 柱色谱与制备色谱结合应用于Glucoerucin的分离纯化工艺研究 | 第82-94页 |
| ·引言 | 第82页 |
| ·相关理论 | 第82页 |
| ·主要试剂及仪器 | 第82-83页 |
| ·试验方法 | 第83-85页 |
| ·串联树脂柱的应用 | 第83页 |
| ·反相制备色谱进行纯化 Glucoerucin | 第83-85页 |
| ·流动相的配置 | 第83-84页 |
| ·进样阀的预处理 | 第84页 |
| ·色谱柱的预处理 | 第84页 |
| ·优化制备色谱纯化 Glucoerucin 的条件 | 第84-85页 |
| ·结果讨论 | 第85-93页 |
| ·串联树脂柱色谱用于分离纯化 Glucoerucin 的工艺研究 | 第85-88页 |
| ·串联树脂柱分离纯化工艺图 | 第85-86页 |
| ·串联树脂柱处理前后分离纯化效果比较 | 第86-87页 |
| ·不同解吸剂的解吸效果的比较 | 第87-88页 |
| ·串联树脂柱色谱分离纯化前后液相图谱 | 第88页 |
| ·制备色谱纯化 Glucoerucin 的条件的优化 | 第88-91页 |
| ·流动相比例的确定 | 第88-89页 |
| ·流速的确定 | 第89-90页 |
| ·上样量的确定 | 第90-91页 |
| ·产品的结构鉴定 | 第91-93页 |
| ·与文献中方法比较 | 第93页 |
| ·本章小结 | 第93-94页 |
| 第五章 利用Glucoerucin（GER）生产Glucoraphanin (GRA)的工艺研究 | 第94-108页 |
| ·引言 | 第94页 |
| ·相关理论 | 第94-95页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第95-96页 |
| ·实验方法 | 第96-98页 |
| ·配制 H2O2溶液 | 第96页 |
| ·Glucoerucin 粗品溶液的配置 | 第96页 |
| ·Glucoerucin 和 Glucoraphanin 液相条件的确定 | 第96页 |
| ·Glucoraphanin 对照品溶液的配置 | 第96-97页 |
| ·绘制标准曲线 | 第97页 |
| ·优化制备色谱纯化 Glucoraphanin 的条件 | 第97-98页 |
| ·结果与讨论 | 第98-107页 |
| ·Glucoerucin 氧化成 Glucoraphanin 工艺参数的考察 | 第98-102页 |
| ·双氧水与 Glucoerucin 的摩尔比对氧化率的影响 | 第98-99页 |
| ·温度对氧化率的影响 | 第99-100页 |
| ·氧化时间对氧化率的影响 | 第100-102页 |
| ·制备色谱纯化 Glucoraphanin 的条件优化 | 第102-105页 |
| ·流动相比例的确定 | 第102-103页 |
| ·流速的确定 | 第103页 |
| ·进样量的确定 | 第103-105页 |
| ·Glucoraphanin 结构的确定 | 第105-107页 |
| ·本章小结 | 第107-108页 |
| 第六章 结论 | 第108-110页 |
| 参考文献 | 第110-116页 |
| 研究成果及发表的学术论文 | 第116-117页 |
| 致谢 | 第117-118页 |
| 作者及导师简介 | 第118-119页 |
| 附件 | 第119-120页 |
