| 中文摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-10页 |
| 符号说明 | 第10-13页 |
| 第一部分 文献综述 | 第13-28页 |
| 第一章 破骨细胞与骨代谢 | 第13-17页 |
| 1 骨 | 第13-14页 |
| ·骨吸收 | 第14页 |
| 2 破骨细胞生物学特性 | 第14-17页 |
| ·OC来源和发育 | 第14-15页 |
| ·OC形态与功能 | 第15页 |
| ·OC与骨吸收 | 第15-17页 |
| 第二章 骨保护素对骨的作用 | 第17-19页 |
| ·OPG的结构 | 第17页 |
| ·OPG的作用及应用 | 第17-19页 |
| ·OPG在骨质疏松等骨病中的应用 | 第18页 |
| ·OPG在心血管疾病中的应用 | 第18-19页 |
| 第三章 NF-κB信号通路 | 第19-26页 |
| 1 | 第19-22页 |
| ·NF-κB信号通路相关因了概述 | 第19-20页 |
| ·NF-κB生物学特性 | 第19-20页 |
| ·IκB生物学特性 | 第20-21页 |
| ·IKK生物学特性 | 第21-22页 |
| 2 NF-κB信号通路激活及调节 | 第22-24页 |
| 3 NF-κB生物学功能 | 第24页 |
| 4 NF-κB在疾病中的应用 | 第24-25页 |
| ·NF-κB在动脉粥样硬化中的作用 | 第24-25页 |
| ·NF-κB在肿瘤中抗凋亡的作用 | 第25页 |
| 5 NF-κB的特异性抑制剂-吡咯烷二硫氨基甲酸(PDTC) | 第25-26页 |
| 参考文献 | 第26-28页 |
| 第二部分 研究内容 | 第28-41页 |
| 第一章 RAW264.7细胞培养 | 第28-34页 |
| 1 材料 | 第28-29页 |
| ·实验细胞 | 第28页 |
| ·主要试剂 | 第28页 |
| ·主要仪器 | 第28-29页 |
| 2 方法 | 第29-32页 |
| ·溶液的配制 | 第29-30页 |
| ·RAW264.7细胞培养 | 第30页 |
| ·RAW264.7细胞传代 | 第30页 |
| ·RAW264.7细胞冻存与复苏 | 第30-31页 |
| ·RAW264.7细胞增殖情况的研究 | 第31页 |
| ·RAW264.7细胞的形态学观察 | 第31页 |
| ·结果 | 第31-32页 |
| 3 讨论 | 第32-34页 |
| ·RAW264.7细胞控制生长与传代 | 第32-33页 |
| ·细胞复苏对细胞的影响 | 第33页 |
| ·冻存过程注意事项 | 第33-34页 |
| 第二章 OPG对RAW264.7细胞分化为OC的影响 | 第34-41页 |
| 1 材料 | 第34-35页 |
| ·实验细胞 | 第34页 |
| ·主要试剂 | 第34-35页 |
| ·主要仪器 | 第35页 |
| 2 方法 | 第35-36页 |
| ·RANKL、OPG对RAW264.7细胞增殖的影响 | 第35页 |
| ·OPG对破骨细胞生成的影响 | 第35-36页 |
| ·统计分析 | 第36页 |
| 3 结果 | 第36-39页 |
| ·RANKL、OPG对细胞增殖的影响 | 第36-37页 |
| ·RANKL对RAW264.7细胞增殖的影响 | 第36-37页 |
| ·OPG对细胞增殖的影响 | 第37页 |
| ·OPG对OC生成的影响 | 第37-39页 |
| 4 讨论 | 第39-41页 |
| 第三部分 OPG对NF-κB通路相关蛋白表达的影响 | 第41-50页 |
| 1 材料 | 第41-42页 |
| ·实验细胞 | 第41-42页 |
| ·主要试剂 | 第42页 |
| ·主要仪器 | 第42页 |
| 2 方法 | 第42-44页 |
| ·PDTC对RAW264.7细胞增殖影响 | 第42页 |
| ·蛋白提取与预处理 | 第42-43页 |
| ·核蛋白、浆蛋白提取与处理 | 第42-43页 |
| ·细胞全蛋白提取及处理 | 第43页 |
| ·SDS-PAGE and Western blotting | 第43-44页 |
| ·统计分析 | 第44页 |
| 3 结果 | 第44-48页 |
| ·PDTC对细胞增殖影响 | 第44页 |
| ·不同浓度OPG对NF-κB P65表达量的影响 | 第44-46页 |
| ·不同浓度OPG对IκBα表达量影响 | 第46-47页 |
| ·不同浓度OPG对IκBβ表达量影响 | 第47-48页 |
| 4 讨论 | 第48-50页 |
| 参考文献 | 第50-53页 |
| 全文结论 | 第53-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
